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神经组织染色怎样正确使用固定剂?

2021-08-20 14:34


1.神经髓鞘(Loyez、Page法)染色:应采用20%甲醛或甲醛钙液固定,不少于72小时;Kultschi tsky染色法,组织固定于Flemming液(1%铬酸水溶液15ml+2%四氧化俄4ml+冰乙酸lml)中72小时。Page搔洛铬花青法或Swank-Daveport法,组织固定于10%甲酵生理盐水或甲醛钙液中。

2.神经胶质细胞(Gajal法)染色:可固定于溴甲醛液(溴化铵2g+甲醛15ml+蒸馏水85ml)中固定, 2〜5天。(Grono法)染色,组织固定于(尿素4g+碘化钾6g+甲醛20ml+蒸馏水80ml)液中24~48小时。

3.神经轴突(Davenport-Windle-Beech法):固定于下液(氢氧化铵2ml+无水乙醇98ml)。

4.神经元细胞(Cox)染色法:需固定于(5%升Hg液20ml+5%重格酸钾液20ml+5%格酸钾液16ml + 蒸馏水44ml)先将升Hg液和重格酸钾液混合,重格酸钾液入蒸馏水稀释,再使两者混合,否则易产生沉淀,固定24小时后,换新液。

5.神经纤维Ramony-Cajal三法:①Ramony-Cajal氨乙醇法:组织固定于氨乙醇液(95%乙醇50ml +28%浓氨液4~10滴)。②Rammiy-Cajal吡啶法:组织固定于吡啶水溶液(吡啶25~30ml +蒸馏水25ml) 18~24小时。③Ramony-Cajal水合氯醛法:组织固定于(水合氯醛5.5g+无水乙醇25ml +蒸馏水75ml) 液中24小时,固定后水洗一次。
 

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