GoldenStar® T6 Super PCR Mix Ver.2(1.1×) 金牌 Mix Ver.2 /PCR系列/金牌Mix升级版,耐脏性更强,产量更高/擎科生物TSINGKE
价格: ¥450
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库存 :充足
英文名 :GoldenStar® T6 Super PCR Mix Ver.2(1.1×) 金牌 Mix Ver.2
供应商 :北京擎科生物科技股份有限公司
保存条件 :-25~-15℃保存2年,干冰运输。
规格 :5×1.125 mL
GoldenStar® T6 Super PCR Mix Ver.2(1.1×)
金牌 Mix Ver.2
金牌 Mix Ver.2
金牌Mix升级版,耐脏性更强,产量更高
【产品简介】
金牌Mix Ver.2是金牌Mix(green)(目录号:TSE101)的升级版,其中包含的DNA Polymerase由基因工程改造GoldenStar T6 DNA Polymerase所得,该聚合酶由Pyrococcus酶与一种具有增强持续合成能力的结构域融合而成,其扩增错配率是野生型Taq DNA聚合酶的1/30。本产品中添加了独特的解抑制因子,配合优化后的反应缓冲液,使得其在扩增不同类型模板时表现出很好的兼容性。
本产品同时具有5'→3'DNA聚合酶活性和3'→5'外切酶活性,扩增产物为平末端,适用于基因克隆等对保真性要求较高的实验。本产品包含DNA Polymerase、dNTPs以及优化的反应缓冲液,浓度为1.1×,使用时无需额外添加双蒸水补充体系,只需加入引物和模板即可进行扩增。产品中包含上样缓冲液,不包含核酸染料,扩增产物无需额外添加loading buffer即可直接点样电泳。
【产品特点】
极强的扩增能力与保真性;
添加特异性增强因子,扩增产物具有高特异性;
适用于高GC模板的扩增。
【适用范围】
适用于基因组、cDNA、噬菌体、质粒等DNA模板的扩增,可用于基因克隆等对保真性要求较高的实验。
【产品组成及保存】
-25~-15℃保存条件保存2年,干冰运输。
金牌Mix Ver.2是金牌Mix(green)(目录号:TSE101)的升级版,其中包含的DNA Polymerase由基因工程改造GoldenStar T6 DNA Polymerase所得,该聚合酶由Pyrococcus酶与一种具有增强持续合成能力的结构域融合而成,其扩增错配率是野生型Taq DNA聚合酶的1/30。本产品中添加了独特的解抑制因子,配合优化后的反应缓冲液,使得其在扩增不同类型模板时表现出很好的兼容性。
本产品同时具有5'→3'DNA聚合酶活性和3'→5'外切酶活性,扩增产物为平末端,适用于基因克隆等对保真性要求较高的实验。本产品包含DNA Polymerase、dNTPs以及优化的反应缓冲液,浓度为1.1×,使用时无需额外添加双蒸水补充体系,只需加入引物和模板即可进行扩增。产品中包含上样缓冲液,不包含核酸染料,扩增产物无需额外添加loading buffer即可直接点样电泳。
【产品特点】
极强的扩增能力与保真性;
添加特异性增强因子,扩增产物具有高特异性;
适用于高GC模板的扩增。
【适用范围】
适用于基因组、cDNA、噬菌体、质粒等DNA模板的扩增,可用于基因克隆等对保真性要求较高的实验。
【产品组成及保存】
-25~-15℃保存条件保存2年,干冰运输。
组分 | 规格 |
1.1×金牌Mix Ver.2 | 5 × 1.125 mL |
【注意事项】
请使用高质量模板;
请勿使用dUTP和含有尿嘧啶的引物与模板;
本产品不推荐用于菌落或菌液扩增,如有需要推荐使用我公司菌P专用PCR Mix(目录号:TSE005);
PCR Mix应避免反复冻融,短期内多次使用可置于2~8℃保存。使用前,Mix解冻后应充分混匀。
【操作流程】
1. 推荐PCR反应体系
组分 | 25 µL体系 | 50 µL体系 | 终浓度 |
1.1 × 金牌Mix Ver. 2a | 22 µL | 45µL | 1× |
10 µM 上游引物 | 1 µL | 2 µL | 0.4 µM |
10 µM 下游引物 | 1 µL | 2 µL | 0.4 µM |
模板DNAb | 1 µL | 1 µL |
a. 推荐使用50 µL扩增体系;金牌Mix Ver.2用量至少占总反应体积的80%。
b. 模板推荐量:
试剂盒提取的基因组DNA:50~200 ng;
CTAB法提取的基因组DNA:100~500 ng;
质粒和噬菌体:0.05~1 ng;
cDNA:推荐将反转录产物原液稀释5~10倍后,取1 µL作为模板。
如果模板浓度较低,模板用量可在1~3 µL范围内调整。
过量的模板会导致非特异性扩增,过少的模板易导致PCR扩增效率低。
2. 推荐PCR反应程序
步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 98℃ | 2 min | 1 |
变性 | 98℃ | 10 s | 30~35 cyclesc |
退火a | Tm+3~5℃ | 10~15 s | |
延伸b | 72℃ | 20 s/kb | |
终延伸 | 72℃ | 1~5 min | 1 |
保存 | 4~12℃ | ∞ |
a. 退火温度:参考引物Tm值,建议退火温度设置为引物中Tm较小值+3~5℃;
b. 延伸时间:延伸速度为20 s/kb时可以满足大部分模板扩增需要,若模板复杂,可以将延伸时间增加至30 s/kb;
c. 扩增循环数:30个循环可满足大部分扩增需要,循环数过多易导致非特异性扩增增加,但若扩增条带较弱,可将循环数增加至35~40个
【问题讨论】
Q1:如何验证是否为PCR酶或是模板本身导致的序列突变?
A1:若为单克隆测序突变,以测序质粒为模板重新做扩增,检测是否再次发生突变。若扩增再出现突变为酶导致,若没有发生突变,则代表不是酶导致,而是原始模板本身存在突变导致。
若为其他类型模板测序后发生突变,可用二次PCR扩增来验证,如果同样的酶同样的模板重复扩增,总是在一个位置突变,说明原始模板本身存在突变导致。如果同一模板同一引物不同酶扩增,在同一位置突变,则也是模板本身存在突变导致。反之,则为PCR酶导致的突变。
Q2:PCR扩增没有出现目的条带的原因?
A2:分析PCR反应的每一个关键环节
1)模板:
a.模板纯度差,含有杂蛋白质,盐离子等,选择质量可靠的提取试剂,重新提取高纯度基因组模板。
b.含有尿嘧啶抑制高保真酶的活性,或含有Taq酶抑制剂。
c.模板浓度过高,或含buffer,抑制PCR扩增;若模板为cDNA,建议稀释10~100倍后使用
d.靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,导致PCR不能有效扩增。
2)引物:其设计及质量是PCR扩增成败的关键。
a.引物设计不合理,如引物长度不够、引物之间形成二聚体等,需要重新设计引物。
b.合成高质量、高纯度级别的引物。
c.引物应高浓度小量分装保存,防止多次冻融或长期4℃保存,导致引物降解失效。
3)PCR条件:
a.PCR扩增条件:变性温度低、变性时间短都有可能出现扩增无产物;退火温度过低,可导致非特异性扩增而降低特异性扩增效率;退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
b.反应体系:反应体系配制错误,建议重复实验。
4)酶失活,建议更换新酶,或新旧两种酶同时使用,以分析是否因酶的活性丧失或活性降低而导致没有产物;酶扩增效率低,建议更换扩增效率高的酶。
Q3:金牌在-20℃,有时部分冻不上?
A3:为了保护DNA聚合酶的活性,在金牌mix里添加了保护剂。如果mix没有混匀,那么低温下水结冻而保护剂没有结冻,就出现了冻不匀的现象。
本试剂产品仅供科学研究或进一步生产使用,不可用于临床诊断或治疗。
北京擎科生物科技股份有限公司
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