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计数是细胞培养过程中不可或缺的重要步骤之一。
是什么阻碍了你成为细胞计数大神?
---- 温馨小Tips ----
是什么阻碍了你成为细胞计数大神?
- 工作量大,精力不够——计数样品太多,数起来没完没了
- 数学渣——数也数不清,好不容易数完也算不清
- 手残党——调焦调光差强人意,同一样品多次计数时结果误差大
- 不想做——还没开始细胞实验,已经对计数过程瑟瑟发抖
擦擦眼泪,我们只要运用专业有效的计数方法,可以准确的测定细胞数量,检测细胞的活力状况(活细胞的比例)。
而这这对细胞培养过程中的环境条件的控制、细胞生长状态的监控,有着至关重要的表征意义。
---- 准备工作 ----
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血细胞计数板预处理:
用酒精清洗并擦拭盖玻片,并让酒精自然挥发干透 -
细胞悬液的准备:
悬浮细胞可直接通过取样,离心,重悬后,直接获取细胞悬浮液。贴壁细胞可使用胰蛋白酶进行消化后离心、重悬。
轻轻用移液枪吹打细胞悬液3-5次至细胞均匀分布在液体中。
立刻吸取10-20 µL的细胞悬液样品至新的微量离心管中,并按照1:1的比例加入等量的0.4%的台盼蓝染液,混匀后,静置1-2分钟。
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加样计数
轻轻吹打染色后的细胞样品,吸取10-12 µL加至血细胞计数板凹槽处,利用毛细现象使样品均匀铺开。
在显微镜下对准计数板样品区域,用10倍物镜聚焦至计数板的网格线上。
视野中,活细胞会拒染台盼蓝,呈现透亮的光泽,边缘轮廓清晰,死细胞则被台盼蓝染色,呈现出不透明的蓝色。对计数板四角的四个大格中的细胞进行计数(需要测定细胞活力时,活细胞、死细胞需分开单独计数)。对于压住四周边缘线的细胞,仅将其中2条线作为压线细胞可计入计数的范围(如仅计算左边和顶部两条线的压线细胞)。
移动计数板,至视野内出现移至下一组16个角格的大格进行计数,直到所有4组16个角格全部计数完毕。
---- 样品中细胞浓度的计算----
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计算过程:
假设四个角方格计数分别为A、B、C、D
四组16个角方格计数出的细胞总数为 (A+B+C+D)
取每组16个角方格的平均细胞数即 (A+B+C+D)/4
则计数样品中的细胞浓度为 (A+B+C+D)/4 x 10 4个/mL
血细胞计数板每个大方块可以容纳的体积为:
1 mm2×0.1 mm = 0.1 mm3 = 10-4 cm3 = 10-4 ml
即每个大方块的体积为万分之一毫升,因此在计算每毫升液体中的细胞数时需要乘以10 4
则加入台盼蓝之前的细胞原液的浓度为上述浓度的2倍 (A+B+C+D)/2 x 10 4个/mL
假设上述计数过程中四个角方格中的活细胞数目为E,死细胞数目为F
细胞活力(活细胞比例)=E/(E+F) x 100% -
应用举例:
如果16个方格的细胞计数分别为51、42、47、55,则平均细胞计数为:最终数值为原细胞悬液中活细胞数/mL。
(51 + 42 + 47 +55) ÷ 4 = 48.75
48.75 x 10 4= 4.875 x 10 5
4.875x 10 5x 2 = 9.75] x10 5个/mL (在细胞原液中)
---- 温馨小Tips ----
- 血细胞计数板为玻璃材质,在使用前后需小心处理、轻拿轻放,避免摔碎。
- 台盼蓝染料内往往会存在一些不溶的杂质,干扰计数结果。因而,在染色前对台盼蓝染料进行离心,吸取上清使用有利于减少杂质引起的计数误差。
- 台盼蓝染料有一定的细胞毒性和致癌性,确保染色后的细胞在10分钟以内完成计数,并且避免皮肤直接接触。
- 加样至计数板凹槽时,确保细胞悬液均一地在盖玻片和计数板之间铺平,如有细胞在计数区域产生,会影响计数结果的准确性。
- 计数图像的清晰度对计数结果的准确度有较大的影响。计数前请务必确保调整相机的焦距至激光蚀刻线清晰可见,此时活细胞中部有明显的光泽、轮廓清晰。
- 四个大格内的细胞总数控制在100-200个之间时,计数的准确度更好,细胞浓度过低或者过高都会影响计数结果。聚团细胞按一个细胞计算,但若视野中出现的聚团细胞较多,需考虑样品制备时消化过程是否处理不当。
- 为了减少单次计数的误差,可对一个样品进行多次计数取平均值。
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