EZ 594 TUNEL细胞凋亡检测试剂盒（红色荧光）

产品描述
细胞凋亡的一个显著特点是细胞染色体 DNA 的降解，这是一个较普遍的现象。这种降解非常特异并有规律，所产生的不同长度的 DNA 片段约为 180 bp-200 bp 的整数倍，表现为琼脂糖凝胶电泳中呈现特异的梯状 Ladder 图谱，本试剂盒采用 TUNEL 法，应用末端脱氧核糖核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)在凋亡细胞断裂DNA 的3´-OH 末端催化掺入EZ 594-dUTP。EZ 594-dUTP标记的 DNA 可以用荧光显微镜直接观察或者用流式细胞仪定量。 TUNEL法可以选择性的检测凋亡细胞，而非坏死细胞或因辐照和药物治疗而造成的 DNA 链断裂的细胞。TUNEL 实验中， TdT 酶催化 dUTP 掺入断裂的 DNA 链的3´-OH末端。抗原标记的 dUTP（如digoxin-dUTP、生*素-dUTP），因为它可以直接进行原位检测，是一种更快速、直接的检测手段。
订购信息

产品名称	货号	规格
EZ 594 TUNEL细胞凋亡检测试剂盒（红色荧光）	AC12L052	20 T
EZ 594 TUNEL细胞凋亡检测试剂盒（红色荧光）	AC12L053	50 T

产品组分

组分	20 T	50 T
A.EZ 594 TUNEL Reaction Buffer	1 mL	2 × 1.25 mL
B.TdT Enzyme	20 μL	50 μL
C.Proteinase K (2 mg/mL)	40 μL	100 μL
D.DNase I (2 U/μL)	5 μL	13 μL
E.10 × DNase I Buffer	100 μL	260 μL

运输与保存
蓝冰运输。-20℃避光保存，有效期24个月。【注】：避免反复冻融。
实验材料（自备）
PBS缓冲液（1×，pH~7.4）
0.2% Triton X-100（PBS配制）
0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）
4%多**醛（PBS配制）
免疫组化笔
脱蜡溶剂（石蜡切片样本）
石蜡切片处理相关试剂
抗荧光淬灭封片剂
ddH₂O
使用方法
一、实验设计
1. 阳性对照（可选）：
DNase I处理制备阳性对照载玻片。DNase I可以消化单链或双链DNA产生单脱氧核苷酸或单链或双链的寡脱氧核苷酸的核酸内切酶，人为造成细胞凋亡。

阴性对照（可选）：

使用不含TdT Enzyme的TUNEL Reaction Buffer，用ddH₂O替代TdT Enzyme。

实验处理组。

4. 实验对照组。
二、实验步骤
1. 样本准备：
对于贴壁细胞或细胞涂片
（1）PBS清洗1次。【注】：如果担心细胞涂片的细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。
（2）固定：加入适量4%多**醛（PBS配制），室温固定30 min。PBS清洗2次。
（3）通透：加入适量0.2% Triton X-100（PBS配制），室温通透20 min。PBS清洗2次。
（4）转步骤2. TUNEL 反应。
对于悬浮细胞或细胞悬液
（1）收集细胞（ 3-5×10⁶个细胞），1000 rpm离心5 min，PBS清洗2次。
（2）固定：加入适量4%多**醛（PBS配制）充分重悬细胞，4℃固定30 min。2000 rpm离心5 min，PBS清洗2次。
（3）通透：加入适量0.2% Triton X-100（PBS配制），室温通透20 min。2000 rpm离心5 min，PBS清洗2次。
（4）转步骤2. TUNEL 反应。
石蜡组织切片
（1）脱蜡与水化：将切片样本依次放入二甲苯I（10 min）→ 二甲苯II（10 min）→ 100％乙醇I（5 min）→ 100％乙醇II（5 min）→ 95%乙醇（5 min）→ 90%乙醇（5 min）→ 80%乙醇（5 min）→ 70%乙醇（5 min）→ ddH2O冲洗5 min，冲洗2次。【注】：二甲苯有毒，易挥发，请在通风橱中进行此操作。
（2）用滤纸吸干切片样本周围液体，用免疫组化笔圈好样本轮廓，以便下游通透与标记。
注：若在后续实验操作中发现免疫组化笔画的轮廓圈被破坏，需及时补画。
（3）通透：按1: 100的比例，将2 mg/mL的Proteinase K溶液用PBS稀释至终浓度20 µg/mL，在每个样本上滴加100 µL，使溶液覆盖全部样本区域，20-37℃孵育20 min。【注】：Proteinase K可通透细胞膜和核膜，从而使后续步骤的染色试剂充分进入细胞核进行反应，提高标记效率。孵育时间过长会增加组织切片在后续洗涤步骤中从载波片上脱落的风险，过短则可能造成透性处理不充分，影响标记效率。为得到更好的结果，Proteinase K的浓度、孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化。
（4）PBS漂洗切片2次，每次5 min，用滤纸吸去多余的液体，将处理好的样本放在湿盒中保持湿润。
注：这一步必须把Proteinase K洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
（5）转步骤2. TUNEL 反应。
冰冻组织切片
（1）固定：取出冰冻切片，并回温至室温。加入适量4%多**醛（PBS配制），室温固定30 min。PBS漂洗2次，每次10 min。【注】：若是担心甲醛清洗不干净，影响最终染色效果。可在甲醛固定完成后加入适量2 mg/mL 甘*酸清洗 10 min，中和残留的固定液，再进行PBS清洗。
（2）用滤纸吸干切片样本周围液体，用免疫组化笔圈好样本轮廓，以便下游通透与标记。
注：若在后续实验操作中发现免疫组化笔画的轮廓圈被破坏，需及时补画。
（3）通透：按1: 100的比例，将2 mg/mL的Proteinase K溶液用PBS稀释至终浓度20 µg/mL，在每个样本上滴加100 µL，使溶液覆盖全部样本区域，20-37℃孵育20 min。【注】：Proteinase K可通透细胞膜和核膜，从而使后续步骤的染色试剂充分进入细胞核进行反应，提高标记效率。孵育时间过长会增加组织切片在后续洗涤步骤中从载波片上脱落的风险，过短则可能造成透性处理不充分，影响标记效率。为得到更好的结果，Proteinase K的浓度、孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化。
（4）PBS漂洗切片2次，每次5 min，用滤纸吸去多余的液体，将处理好的样本放在湿盒中保持湿润。【注】：这一步必须把Proteinase K洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
（5）转步骤2. TUNEL 反应。
阳性处理（仅阳性对照进行此步骤，其他样品直接进行TUNEL反应步骤）
（1）按1: 10的比例用ddH2O将10× DNase I Buffer稀释成1× DNase I Buffer备用。
（2）滴加100 µL 1× DNase I Buffer到已处理的样本上，覆盖全部样本区域，室温平衡5 min。
（3）用1× DNase I Buffer以1: 100稀释DNase I (2 U/μL)至终浓度20 U/mL的工作液。
（4）弃去Buffer，加入100 μL浓度为20 U/mL的 DNase I工作液，室温孵育10 min。
（5）弃去DNase I工作液，PBS清洗2次。
（6）转步骤2. TUNEL 反应。
2. TUNEL 反应
配制TUNEL反应液（即用即配）：

	1个样本	5个样本	10个样本
TdT酶	1 μL	5 μL	10 μL
EZ 594 TUNEL Reaction Buffer	49 μL	245 μL	490 μL
TUNEL反应液总体积	50 μL	250 μL	500 μL

对于贴壁细胞、细胞涂片或组织切片
（1）每个样本加入50 μL TUNEL反应液，使反应液均匀覆盖样本。37℃避光孵育适宜的时间（细胞推荐染色时间30min-1h，组织染色时间推荐2h）。【注】：50 μL TUNEL反应液适合涂片、切片或96孔板（其他不同孔板可以适当调整TUNEL反应液体积，覆盖细胞即可）。如果待检测的样品为涂片、切片或在24孔板、12孔板或6孔板中，可以使用防蒸发膜，或自行尝试使用自封袋或者其它适当材料自行裁剪成比孔略小的圆形塑料片，滴加TUNEL反应液后覆盖在样品上，可以防止TUNEL反应液蒸发，并且使TUNEL反应液均匀覆盖样本。
（2）弃去TUNEL 反应液，PBS漂洗2次，每次5 min。【注】：为了降低背景，PBS漂洗切片1次后，可再用0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）漂洗3次，每次 5 min，这样游离的未反应的标记物可以清除较干净。
（3）（可选）每个样本加入适量浓度为5 μg/mL 的DAPI染液，室温避光孵育5 min。染色完成后，弃去DAPI染液，PBS漂洗2次，每次5 min。
（4）（可选）切片封片：将切片依次在纯水、70%乙醇、80%乙醇、90%乙醇、95%乙醇、无水乙醇中浸没5 min，最后将切片样本置于染色缸中以新鲜的二甲苯浸泡，透明化处理2次，每次5 min。脱水完成后，擦去切片周围的液体，每个样本滴加50 μL抗荧光淬灭封片剂（抗荧光淬灭封片剂可能会不适用于某些染料，实验前建议进行预实验测试匹配性），盖上盖玻片，用镊子的钝端轻轻敲击盖玻片，去除气泡以使封片完全。
（5）用滤纸吸去多余的液体，向样本区域加100 μL PBS保持样本湿润，立即在荧光显微镜下观察。
对于悬浮细胞或细胞悬液
（1）每个样本管加入50 μL TUNEL反应液轻轻重悬细胞，37℃避光孵育30~60 min。每隔15 min用微量移液器轻轻重悬细胞。
（2）2000 rpm 离心5 min，弃去TUNEL 反应液，加入适量0.1% Triton X-100（PBS配制，其中含5 mg/mL BSA）轻轻重悬细胞，并清洗2次。
（3）每个样本管加入100 μL浓度为5 μg/mL的DAPI染液，室温避光孵育5 min。
（4）加入400 μL PBS重悬细胞，立即用流式细胞仪检测或进行涂片后在荧光显微镜下观察。
注意事项