2×实时荧光定量PCR扩增预混液(qPCR试剂盒)

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研选2×实时荧光定量PCR扩增预混液(qPCR试剂盒)

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全仪器平台通用,无需调整ROX浓度; 可检测单拷贝基因;复孔Ct值标准偏差<0.2;精准度高

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库存 :大量

英文名 :Hieff UNICON® Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix

保质期 :18个月

供应商 :翌圣生物科技(上海)股份有限公司

保存条件 :-20度

规格 :1ml/5×1mL/5×5mL/50×1mL/100×1mL

Hieff UNICON® Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix实时定量PCR扩增的预溶液,具有高灵敏度和高特异性的特点,颜色为蓝色,具有加样示踪的作用。核心组分Hieff UNICON® Taq DNA聚合酶采用抗体法热启动,可以有效抑制样品准备过程中引物退火导致的非特异性扩增。同时配方添加了提升PCR反应扩增效率因子和均衡不同GC含量(30~70%)基因扩增的促进因子,使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。
本产品中含有特殊的ROX Passive Reference Dye,适用于所有qPCR仪器,无需在不同的仪器上调整ROX的浓度,只需在配制反应体系时加入引物和模板即可进行扩增。

 
运输和保存方式
冰袋运输。-20℃避光储存,有效期18个月。
本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。
 
注意事项
1. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒(货号11141ES),以有效去除RNA样品中残留的基因组。
2. 解冻后Master Mix可能出现絮状或白色沉淀,手握缓慢溶解并上下轻柔颠倒混匀至溶液澄清,不影响试剂性能。
3. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。   
4. 本产品仅作科研用途!
 
反应体系

组分 体积(μL 体积(μL 终浓度
Hieff UNICON® Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix 25 10
Forward Primer (10 μM) 1 0.4 0.2 μM
Reverse Primer (10 μM) 1 0.4 0.2 μM
模板DNA X X -
无菌超纯水 to 50 to 20 -
:使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。
a) 引物浓度通常引物终浓度为0.2 μM,也可以根据情况在0.1-1.0 μM之间进行调整。
b) 模板浓度:如模板为未稀释cDNA原液,使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10
c) 模板稀释:cDNA原液建议5-10倍稀释,最佳模板加入量以扩增得到的Ct值在20-30个循环为好。     
d) 反应体系:推荐使用20 μL50 μL,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
e) 体系配制:请于超净工作台内配制,并使用无核酸酶残留的枪头、反应管;推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染。
标准程序                                         快速程序
循环步骤 温度 时间 循环数   循环步骤 温度 时间 循环数
预变性 95 2 min 1   预变性 95 30 sec 1
变性 95 10 sec 40   变性 95 3 sec 40
退火/延伸 60 30 sec   退火/延伸 60 20 sec
熔解曲线阶段 仪器默认设置 1   熔解曲线阶段 仪器默认设置 1

【注】 快速程序适用于绝大多数基因,个别复杂二级结构基因可尝试标准程序。
a) 退火温度和时间:请根据引物和目的基因的长度进行调整。
b) 荧光信号采集():请勿忘记打开荧光信号采集,按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置,几种常见仪器的时间设定如下:
20 secApplied Biosystems 7700, 7900HT, 7500 Fast
31 secApplied Biosystems 7300
32 secApplied Biosystems 7500
c) 熔解曲线:通常情况下可以使用仪器默认程序。
 
结果分析
定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。
 
1) 扩增曲线标准扩增曲线为S型。
Ct落在20-30之间时,定量分析最准确;
Ct值小于10,需要将稀释模板后,重新进行实验;
Ct值介于30-35之间时,需要提高模板浓度,或者增大反应体系的体积,以提高扩增效率,保证结果分析的准确性;
Ct值大于35时,检测结果无法定量分析基因的表达量,但可用于定性分析。
 
2) 熔解曲线:
熔解曲线单峰,表明反应特异性好可以进行定量结果分析;若熔解曲线出现双峰或者多峰,则不能进行定量分析。
熔解曲线出现双峰,需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。
如果是引物二聚体,建议降低引物浓度,或者重新设计扩增效率高的引物。
如果是非特异性扩增,请提高退火温度,或者重新设计更高特异性的引物。
 
引物设计指南
1. 推荐引物长度25 bp左右。扩增产物长度150 bp为佳,可以在100 bp-300 bp内选择。
2. 正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2。引物Tm60-65为佳。
3. 引物碱基分布要均匀,避免出现连续的4个相同碱基,GC含量控制在50%左右。3’端最后一个碱基最好为GC
4. 引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有3个碱基以上的互补序列。
5. 引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补。
6. 设计完成的引物需要进行扩增效率的检测,只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。
 
适用机型
ABI: 5700, 7000, 7300, 7700, 7900HT Fast, StepOne, StepOne Plus; 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio 3 and 5, QuantStudio 6,7,12k Flex;
Stratagene: MX3000P, MX3005P, MX4000P;  
Bio-Rad: CFX96, CFX384, iCycler iQ, iQ5, MyiQ, MiniOpticon, Opticon, Opticon 2, Chromo4;
Eppendorf: Mastercycler ep realplex, realplex 2 s;
Qiagen: Corbett Rotor-Gene Q, Rotor-Gene 3000, Rotor-Gene 6000;
Roche Applied Science: LightCycler 480, LightCycler 2.0; Lightcycler 96;
Thermo Scientific: PikoReal Cycler;
Cepheid: SmartCycler; Illumina: Eco qPCR. 
 

HB221205

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