组织细胞基因组DNA快速提取试剂盒

组织细胞基因组DNA快速提取试剂盒

价格: ¥631 - 1138

品牌:泽叶生物

货号:ZY1141N

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库存 :大量

英文名 :组织细胞基因组DNA快速提取试剂盒

保质期 :-20℃保存2年

供应商 :上海泽叶生物科技有限公司

保存条件 :-20℃

规格 :

组织细胞基因组DNA快速提取试剂盒

● 裂解液MS中含变性剂,请不要直接接触皮肤。

● 漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,即含75%乙醇。

 

产品说明

本产品用于多种动物组织(新鲜或冻存)与培养细胞等样本的基因组DNA的纯化。其纯化原理是利用细胞裂解液裂解细胞核释放基因组DNA,由硅胶膜柱可逆吸附基因组DNA,经蛋白酶消化、漂洗液清洗除去蛋白质、脂质以及多糖等杂质后,用纯化液洗脱获得基因组DNA。本产品可从不超过10 mg组织材料或不超过1×106-107培养细胞中提取到3-35 μg 超纯基因组DNA(OD260/OD280 = 1.7-1.9),此基因组DNA可直接用于PCR、酶切、文库构建等后续实验。

 

质量控制

纯化的基因组DNA质量通过限制性酶切和单拷贝基因的PCR扩增鉴定。

 

保存条件

蛋白酶K室温运输,于-20℃保存,避免反复冻融。

其余试剂置于室温(15-25℃)干燥条件下保存1年。

如果消化缓冲液DS和MS中有沉淀,可在55℃加热溶解,待恢复室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA的纯化效率。

 

注意事项--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

● 漂洗液PE第一次使用前请按瓶上标签加入3倍体积的无水乙醇,即15 ml漂洗液PE加入45 ml无水乙醇,30 ml漂洗液PE加入90 ml无水乙醇,使用后立即盖紧盖子。

● 消化缓冲液DS和裂解液MS室温保存可能会有沉淀产生,在55℃加热溶解,待恢复至室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA纯化效率。

● 应尽量使用新鲜的实验材料,确保提取的基因组DNA不被降解。不能立刻提取基因组DNA 的实验材料应尽快置于液氮或-80℃冰箱中保存并避免反复冻融。

● 使用液氮研磨组织材料时,应随时加入液氮,确保提取的基因组DNA不被降解。

● 基因组DNA需长期保存时,建议使用纯化液TE。用无菌的离心管分装后保存于-20℃或-80℃。

● 所有离心步骤均为室温下进行。

● 请严格按照操作步骤操作。

操作步骤--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

[动物组织]

    取少量样本材料,放入液氮预冷的研钵中,快速用力研磨的同时加入少量液氮,直至样本材料被研磨成粉末。将研磨好的样本转移至1.5 ml离心管中,每管组织材料含量应不超过10 mg。

   ● 某些匀浆困难,或在匀浆过程中DNA容易降解的特殊组织应加液氮研磨。如DNA酶含量丰富的组织:肝脏、脾脏、胰腺、胸腺、淋巴等;胶原蛋白含量丰富的组织:皮肤、肌腱等;角质蛋白含量丰富或坚硬的组织:骨骼等。

   ● 如没有液氮,可用剪刀剪成小块,放入研钵或匀浆器中,加入适量TE(pH 8.0),处理成细胞悬液。将不超过10 mg当量的细胞悬液转移至一个新的1.5 ml的离心管中,12000 rpm离心1min,弃上清,收集沉淀。

● 每支离心管中的样本当量不宜超过10 mg。每10 mg样本材料可获得10μg基因组DNA。样本量过大,将会影响细胞核裂解效率并可能堵塞纯化柱,进而降低基因组DNA的得率与纯度。

[细胞]

贴壁细胞:先用胰酶将贴壁细胞处理成细胞悬液,转移至1.5 ml离心管中,12,000 rpm离心1min,弃上清。

悬浮细胞:直接取适量转移至1.5 ml离心管中,12,000 rpm离心1min,弃上清。

● 每只离心管内的细胞量不应超过1×106-107

2  加入200 μl消化缓冲液DS,漩涡振荡至形成完全均一的悬浮液。

   ● 如需去除RNA,可加入4 μl RNase A(100 mg/ml,N9042),振荡15秒,室温放置5min。

3  加入20 μl蛋白酶K,混匀,55℃水浴或金属浴,至组织完全溶解,通常需要1-3小时。对特别难溶解的组织如尾巴、昆虫可放置过夜。

4  220 μl裂解液MS,漩涡振荡混匀,65℃温浴10min,溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠,室温放置5min使溶液冷却。

   ● 加入裂解液MS时可能会产生白色沉淀,一般65℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA 不纯。       

5  加入220 μl无水乙醇,上下颠倒混匀,此时可能出现絮状沉淀,简短离心以去除管盖内壁的水珠,将溶液及絮状沉淀转移到纯化柱中。12,000rpm离心1min,弃滤液。

   ● 若溶液体积大于纯化柱容积(700 μl),可分两次离心。

● 此时基因组DNA被吸附于DNA纯化柱中的硅胶膜上。

6  加入500 μl去蛋白液PS,12,000 rpm离心1min,弃滤液。

  ● 此步骤的作用是去除硅胶膜上吸附的蛋白、脂质等杂质,以获得高质量基因组DNA。

7  加入500μl漂洗液PE,12,000 rpm离心1min,弃滤液。

 ● 漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,即含75%乙醇。

8  加入500 μl漂洗液PE,12,000 rpm离心1min,弃滤液。12,000 rpm离心3min,以彻底去除纯化柱中残留的液体。

   ● 此步骤的作用是去除残留乙醇,避免影响后续的酶促反应(PCR或酶切)。同时利于基因组DNA充分溶解。

9  将纯化柱置于新的1.5 ml离心管中。向纯化柱中央处,悬空滴加30-100μl洗脱液TE,室温放置2min。

10  12,000 rpm离心2min,管底即为高纯度基因组DNA,-20℃保存。

   ● 洗脱液TE可用去离子水代替,但其pH需为8.0-8.5。

● 对洗脱液TE 65℃预热,会提高基因组DNA的产量。

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