提供商 ：至善北京健康医学研究院

服务名称 ：大小鼠海马侧脑室脑立体定位病毒注射实验外包服务

规格 ：大小鼠海马侧脑室脑立体定位病毒注射实验外包服务

大鼠小鼠海马侧脑室脑立体定位病毒注射技术服务咨询

脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备，利用颅骨表面的标志（如前囟点）为基本参考点，通过三维移动来确定动物大脑皮层下某神经结构（核团）的位置，进而完成对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导定位等操作，可用于帕金森氏病动物模型建立、癫痫动物模型建立、脑内肿瘤模型建立、学习记忆、脑内神经干细胞移植、脑缺血等研究。

小鼠侧脑室给药的，用的是人的Aβ1-4２，深度为颅骨表面向下2.５ｍｍ，下面资料上是２mm.处，一般都用的是人的Aβ，用２５－３５Aβ的便宜用大鼠的Aβ好像没听说过． 

Aβ致痴呆模型 
一、Aβ海马注射致脑内神经炎性反应模型的制备 

（1）实验材料 
动物：SD大鼠，200~250g；NIH小鼠，18~20g 
试剂：Aβ1-40/Aβ25-35为美国Sigma公司产品，麻醉药 
仪器：脑立体定位仪 

（2）实验步骤 
Aβ1-40/Aβ25-35肽段大鼠海马内注射：SD大鼠麻醉，固定于脑立体定位仪上，头顶部去毛，消毒皮肤，头顶部正中切口，暴露前囟，按大鼠脑立位图谱，于前囟后3.0mm，中线右侧2.0mm处，微量注射器自脑表面垂直进针2.8mm，向双侧海马缓慢注入5μl（2μg/ul,用无菌生理盐水溶解Aβ肽段完之后分装，-20度保存，用的时候取出一管37度孵育7天），每侧注射时间5min, 留针2min，缓慢退针。所有操作均在无菌条件下进行，皮肤切开处用青霉素抗菌，缝合伤口。假手术组注射等量生理盐水。 
Aβ1-40/Aβ25-35肽段小鼠海马内注射：立体定向仪固定小鼠（bromega 2.3mm, L:1.8mm, V:2.0mm），根据所需注射部位，按小鼠脑立体定向定位，在钻孔后注射5ul，速度0.2ul/15秒，注射完毕后留针2min，然后每分钟退针1mm。整个注射过程不到10min，注射效果好，小鼠很快从麻醉（气体）中恢复。 
（3）大鼠小鼠海马侧脑室立体定位注射注意事项： 
1、海马与记忆功能有关，AD患者住住以记忆障碍症状，这与疾病早期海马的损害有关，将Aβ肽段注射入海马区，可模拟AD发病过程。推荐使用Aβ1-40，但Aβ25-35也是引起细胞毒炎性反应的重要肽段，且价格便宜，溶解性好。 
2、固定头颅时一定要准确插入双耳固定棒，不能太紧，也不能靠颈部，这样容易刺激迷走神经而引起呼吸停止，难以抢救， 
3、钻孔时一定要控制好，宁慢勿快，很容易在颅骨钻通后一不小心钻头进入脑组织。 
4、麻醉很关键。腹腔注射药物剂量不好掌握，药物用多了小鼠死亡率很高，鼠在手术过程中稍有挣扎，就会对定位有影响，且对操作不利。 

二、Aβ脑室内注射致痴呆模型的制备 
（1）实验材料 
动物：SD大鼠，200~250g；NIH小鼠，18~20g. 
试剂：Aβ1-40/Aβ25-35为美国Sigma公司产品 
仪器：脑立体定位仪 
（2）实验步骤 
Aβ1-40脑室注射大鼠：SD大鼠经腹腔注射10%的水合氯醛（0.4g/kg体重）麻醉后，固定于脑立体定位仪上，头顶部去毛，消毒皮肤，头顶部正中切口，暴露前囟，按大鼠脑立位图谱，向实验组大鼠第三脑室注射Aβ 5μl（2μg/ul，处理方法见前面所述），脑室立体定向坐标为：AP=-1mm,VD=4.5mm;微量注射器自脑表面垂直进针2.6mm，正常对照组为等量生量盐水，其它处理方法见前面所述。 
Aβ1-42脑室注射小鼠：用0.2ｍＬ0.4%麻醉小鼠,将小鼠固定在定位仪上,剪开头顶部皮肤,酒精棉擦拭,暴露出前囟。采用右侧脑室定位,自前囟向后2ｍｍ,矢状缝旁开1.5ｍｍ处,即为侧脑室的体表部位。用微量注射器在此位置穿一小孔,深度为颅骨表面向下2.5ｍｍ处,每只小鼠以2μl/ｍｉｎ恒速注射1.5μlＡβ(2μg/ul)。生理盐水组小鼠注入1.5μＬ生理盐水代替Ａβ。术后24ｈ开始各组分别给予药物治疗,按每天每只小鼠0.2ｍＬ药液灌胃,生理盐水对照组为0.2ｍＬ生理盐水。 
（3）注意事项： 
1、有细胞毒的可溶性Aβ进入脑室，经侧脑室弥漫致全脑，更接近Aβ引起细胞毒作用的实际过程，推荐使用小鼠注射Aβ1-40，其较大鼠造模简单，Aβ用量少造价低。 
2、给药时间：（1）术前给药一周，术后给药一周（2）术后24小时 

－－－－－－－－－几点说明－－－－－－－－－－－－ 
1.Aβ1-40是用无菌生理盐水还是双蒸水溶解的关键是看你实验的对照组海马或者其他部位注射的是无菌生理盐水还是双蒸水，如对照组用无菌生理盐水，那就用无菌生理盐水溶解，因为只有这样才有对照的意义。溶解的浓度要看你买回试剂的时候配置来调节。一般的制作AD模型时，每侧海马注射10ug，我的Ａβ25～3 5（购于Sigma公司）用无菌生理盐水配制成2uｇ/uＬ,37℃下孵育一周,使其变为凝聚态Ａβ25～35。，每侧海马注射5ul。 

2.Aβ1-40的注射部位，用的是海马立体定位注射aav病毒或者侧脑室立体定位aav病毒注射都可以，都有大量的文献报道模型制作成功，主要看你们实验室的习惯在哪个部位。不过我个人认为，注射在海马比较好，因为如果注射在侧脑室容易与脑脊液相溶，影响制作模型的成功。注射海马部位，Aβ停留在脑组织，易于吸收，模型易于成功。 

3.注射量10ug就可以了，量多其不是浪费。再说Aβ并不便宜。不过用于细胞的模型量就不一样了。比如pc12细胞。 

4.Aβ1-40溶解后的保存问题，用无菌生理盐水或者双蒸水溶解完之后分装-20度保存，用的时候取出一管37度孵育7天。孵育的目的是让Ａβ25～3 5老化，使其变为凝聚态Ａβ25～35。因为只有凝聚态Ａβ25～35才能使AD模型制作成功。

【专业大小鼠动物实验海马侧脑室脑立体定位注射腺病毒慢病毒外包技术服务】

提供帕金森(PD)、阿尔兹海默症(AD)、慢性疼痛等神经系统疾病研究一站式服务项目，主要包括模型构建、行为学实验及相关药效评价等。

1、MPTP造帕金森小鼠模型
通过腹腔注射20 mg/kg MPTP溶液诱导C57小鼠表现出呆滞、行动迟缓、转圈、肢体震颤等类似人类PD患者的帕金森症临床症状，并纹状体多巴胺含量显著降低。

2、动物注射技术
公司现有脑立体定位仪两台，配套使用汉密尔顿微量注射器、nanoject II 微量注射器，玻璃管微电极，可实现大小鼠病毒、药物甚至细胞等定位注射。
2.1 大小鼠动物实验海马侧脑室脑立体定位注射腺病毒慢病毒外包技术服务
根据实验目的，利用立体定位仪对活体大小鼠脑进行定位，使用微量注射器将药物或病毒等注射入目的核团。
脑定位注射时，用脑立体定位仪来固定头部，利用颅骨外标志确定颅骨内核团的位置，以便在非暴露下对其进行定向的刺激、破坏、注射药物等。是神经解剖、神经生理、神经药理等领域的重要技术，也可用于帕金森疾病、癫痫、脑内肿瘤等动物模型建立。

2.2 眼内注射（玻璃体腔注射）
根据实验需求，将病毒或药物等通过微量注射器注射穿透巩膜脉络膜视网膜，入玻璃体腔，从而达到转染或治疗等目的。
玻璃体腔注射可作为研究神经药理和视网膜神经环路的重要技术，利用眼球相对独立的结构，将药物等直接注射在眼球腔体中而减少药物等对其他系统的影响，从而可以实现局部给药。

玻璃体腔注射实验外包技术服务             玻璃体腔： AAV-Syn-GcaMP6s

2.3 脊髓注射
根据实验目的，使用微量注射器将药物或病毒等直接灌注到特定的脊髓部位。

脊髓注射可作为研究神经系统药物等对脊髓直接作用的手段，所给药物等可局限于脊髓不同节段，清楚地区分药物等对不同节段的作用。

2.4 尾静脉注射实验外包技术服务
通过尾静脉注射，将一定滴度和体积的重组病毒注射到动物体内，目的基因将得以表达。

至善研究院为您的神经科学研究助力。