液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌

液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌

价格: ¥170 - 1780

品牌:百奥莱博

货号:BTN80929-IHT

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保存条件 :常温运输,溶液A和溶液D需要4℃保存,溶

保质期 :长期

英文名 :Liquid sample nucleic acids extraction kit

库存 :252

供应商 :北京百奥莱博科技有限公司

特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

百奥莱博专业生产供应液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌,我公司销*(代"售")全品类的分子生物学试剂,价格优惠,欢迎广大科研工作者垂询订购。


名称:液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌
产地:国产|进口
英文名:Liquid sample nucleic acids extraction kit
规格:50次
编号:BTN80929
品牌:百奥莱博
本试剂盒是专门用于从各种微量和痕量样品中提取DNA和RNA的试剂盒。

试剂盒特点:
1. 核酸的回收率高,可以达到90%以上,可以跟QIAGEN的同类产品媲美。
2.一管式操作,减少了样品污染的可能。
3.一站式套装,除样品外客户不需要准备任何试剂,降低了实验误差。
4. 安全无毒,不需要使用*酚和*仿等有机溶液。
5.可以处理各种形态的样品,包括液体样品,单个或少量的细胞,微小胚胎等等。
6.与PCR、荧光PCR、RT-PCR、荧光RT-PCR等后续反应兼容。
7. 试剂稳定,可以长期放置。

试剂盒组成:

 
成分 50T
溶液A 15ml
溶液B 25ml
溶液C 50ml
溶液D 5ml
说明书 1份


储存条件:常温运输,溶液A和溶液D需要4℃保存,溶液B和溶液C室温保存,有效期一年。溶液B和溶液C具有挥发性,使用后需要将瓶盖拧紧。

使用方法:
1. 将不超过0.1mL的样品转移到自备的1.5mL 旋盖塑料离心管中。
2. 加入0.3mL溶液A,盖上盖子后振荡3-5秒。
注意:溶液A用前需37℃-65℃水浴融化并充分摇匀后方可使用。
3.室温静置10分钟。
4. 加入0.4mL溶液B,盖上盖子后振荡3-5秒。
5. 15000g室温离心15分钟。强烈建议在离心管管壁上用记号笔做简单标记以区别离心面和向心面。
6.小心移弃上清。注意不要触及离心面管底的核酸沉淀。
7. 加入1.0mL溶液C,振荡数秒后15000g室温离心5分钟。
注意:将离心管放入离心机时一定要将离心面向外。
8.小心移弃上清。
注意不要触及离心面管底的核酸沉淀。
9. 短暂离心数秒。
注意:将离心管放入离心机时一定要离心面向外。
10.小心移弃残留上清(残留的溶液C会影响后续反应)。此时管壁(离心面方向)上将有可见的膜状沉淀。
11. 加入100μl溶液D,用移液枪仔细吹打离心管管底和管壁的膜状沉淀,使其溶解。溶解液如果混浊或有少量不溶物是正常现象,不溶沉淀物中就裹含有核酸。
12. 直接取适量样品用于PCR或RT-PCR,也可短期保存于-20℃或-80℃。
液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌
液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌极具性价比,此外,我公司正火爆促销以下产品:

·土霉素盐*(代"酸")盐溶液
编号:BTN120696
英文名称:Oxytetracycline HCl Solution
规格:10mL
本产品为溶于水:乙醇(2:1)混合液浓度为100mg/mL的土霉素盐*(代"酸")盐溶液,参考浓度为50mg/mL。土霉素烟酸盐(盐*(代"酸")土霉素;氧四环素盐*(代"酸")盐;地霉素;Oxytetracycline hydrochloride),分子式:C22H24N2O9·HCl,分子量是:496.89,CAS号:2058-46-0,土霉素盐*(代"酸")盐能阻止*基酰-tRNA与30S亚单位结合,从而抑制蛋白合成。抗菌谱:革兰氏阴性和阳性细菌。

储存条件:低温运输,-20℃避光保存,有效期6个月。

·PCR污染清除剂
编号:BTN140648
英文名称:DNA Contamination Scavenger
规格:250mL
微量核酸污染导致的PCR假阳性是广大实验者最头痛的问题之一。为解决此难题,本公司开发了本款PCR污染清除剂,本产品无毒、无腐蚀性,可将裸露的核酸完全降解至无法作为扩增模板的小片段,且无法恢复,从而彻底消除PCR 过程中由于各种环境污染而导致的假阳性扩增。

产品特点:
1.本产品为非酶类试剂,所有组分可生物降解、无毒无害。不含有机溶剂或者挥发性物质,不含无机酸或者碱性物质,不会对金属形成腐蚀。
2.产品中各组分协同作用,快速、非序列特异性的降解核酸污染。
3.使用简单,操作方便。喷洒或浸泡处理15分钟即可完成清除作用。
4.可广泛用于清除实验操作台、仪器、塑料和玻璃器皿、移液器、解剖刀、镊子、手套等各种实验器材表面的DNA污染。
5.与传统的PCR污染清除方法,如:稀酸处理法、紫外照射法、尿嘧啶糖苷酶(UNG)法和酶解变性等相比,本产品具有能彻底破坏DNA分子、有效清除小片段核酸等优点。

储存条件:常温运输和保存,有效期两年。

使用方法:
注意:以下操作均需要戴手套进行。本产品可重复使用5-10次,使用后建议密封保存。

工作平台的清洁:
直接将本产品喷于台面,最少15分钟后用普通吸水纸擦净,最后用吸水纸擦净,晾干。
实验仪器的清洁:
用浸有本品的纸擦拭仪器表面,再用吸水纸擦净,晾干。用本品处理金属器械的时间不能超过15分钟。
玻璃和塑料器皿的清洁:
将器皿浸泡在本产品中,静置处理最少15分钟后取出,再用蒸馏水浸泡二次以上,倒立晾干后备用。
移液枪的清洁:
根据生产厂家的使用手卸下移液枪的前端,留下接口塞和圈套后将其浸放在本产品中最少15分钟,再用蒸馏水彻底冲洗后,晾干,装回移液枪。
塑料离心管和滴头的清洁:
将反应塑料离心管和滴头充分浸泡在本产品中最少15分钟以上(最好不要有气泡),然后蒸馏水充分浸泡两次,试管或离心管可立即使用或干燥后备用。


液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌关键词:BTN80929,Liquid sample nucleic acids extraction kit,液体样品RNA和DNA提取试剂盒
液体样品RNA和DNA提取试剂盒品牌

·植物RNA提取试剂盒
编号:BTN3080
英文名称:Plant RNA extraction kit
规格:50次
本试剂盒是我们公司自主开发的独特产品,其原理完全不同于异硫*酸胍/酚/*仿提取方法,克服了后者不能区分RNA(本质上是多糖)和其他植物多糖的缺点,能高效将RNA和其他植物多糖分开,同时还能有效去除多酚和其他植物次级代谢成份。其有效性在近五十多种各类植物(见附录,包括十分棘手的松柏类植物)中得到验证。

试剂盒特点:
1.适用于绝大多数植物,从五十多种植物材料中都成功提取到了总RNA,其中包括松针、柏树、香蕉等用胍/酚/*仿方法未能提取到RNA的植物(注:部分植物组织,如果实,RNase含量极高,需要另外加RVC抑制其活性)。
2. 操作简单快速,最短可以只需要约十五分钟,可以全在室温下进行。
3. 得到的RNA平均 OD260/280在1.9左右,可直接用于RT-PCR和Northern等研究。

试剂盒组成:
成分 50T
溶液A 50ml
溶液B 15ml
溶液C 25ml
溶液D 25ml
说明书 1份


储存条件:常温运输,4℃保存,有效期一年。

使用方法:
1、准备
a)估算试剂和组织细胞的用量并准备足够的*仿、75%乙醇和RNA溶解液(如RNApreserve、无RNase的水或有灭活残留RNase活性的液相RNase清除剂)。每次微量提取一般需要100-200mg植物叶片、或50-100mg植物种子、或200-500mg植物果实。
b)溶解溶液A沉淀。溶液A在4℃放置后可能会产生沉淀,使用前必须放在65℃水浴使沉淀彻底溶解。
2、匀浆
a)先将新鲜植物组织剪切成小块(保存在RNAhold中的植物组织需用纸吸去RNAhold液体后再剪切成小块),放入10-15mL塑料离心管中,加入1mL溶液A,然后用匀浆器匀浆5-20秒,将不超过1mL的匀浆液转移至干净的1.5mL塑料离心管中(可以不必转移非液体的细胞碎片)。匀浆时会产生泡沫,但不影响提取效果。有的植物组织(果实)含有大量水份,匀浆液会多于1mL,转移时也只取1mL。
b)如果用砚磨法破碎植物组织,需将植物组织浸泡在1mL溶液A中再砚磨,尽量避免植物组织跟空气直接接触,然后将砚磨物转移到新的1.5mL离心管中。
3、第一次分相
a)在装有裂解物的离心管中加入0.3mL的溶液B和0.2mL自备*仿,用手上下颠倒或振荡器振荡30秒混匀,此时溶液呈均匀的乳浊状。振荡器振荡时必须使管底溶液震荡起来。
b)室温12000~15000g离心5分钟,两相间将有约5-10毫米厚的细胞破碎物。
c)将上清液(约0.8mL)转移到另一干净的1.5mL塑料离心管中,下层有机相和中间层含有DNA、蛋白质和其他杂质,避免触及或吸取。最好留下100μl上清液不取。
4、第二次分相
a)在上清液中加入0.5mL的溶液C和0.2mL的自备*仿,用手上下颠倒或振荡器振荡30秒混匀,此时溶液呈均匀的乳浊状。振荡器振荡时必须使管底溶液震荡起来。
b)室温12000~15000g离心3分钟,两相间将有白色膜状物(蛋白质)形成。
c)将上清液(约1mL)转移到另一干净的1.5mL塑料离心管中,避免触及或吸取有机相及其上面的白色膜状物。
5、沉淀
a)在上清液中加入0.5倍体积的溶液D,用手上下颠倒或振荡器振荡30秒混匀,此时溶液呈白色浑浊状。振荡器振荡时必须使管底溶液震荡起来。如果提取 50mg以下的微量植物组织样品,最好在此步加入我们公司的微量助沉剂RNApp。
b)室温12000~15000g离心3~5分钟,RNA将在管底形成白色沉淀(约黄豆大小)。如果组织样品量少或需要提高RNA回收率,也可以延长离心时间到20-30分钟。
c)小心移弃上清液,避免触及管底RNA沉淀。
注意:如果加入溶液D离心后沉淀漂浮在上面,说明植物糖份多,溶液比重大,可以少加植物样品,也可以适当加无RNase的水稀释直到沉淀能够沉下去为止。如果离心后管底有类似*仿的相出现,说明上一步离心时间不够或取上清时取到了下层的有机相,可以适当延长离心时间或取上清时留下约100μl不取或在第四步时加0.3mL的自备*仿。
6、第一次清洗
a)在离心管中加入1mL 75%的乙醇,振荡器上振荡混均30秒。
b)室温12000~15000g离心1分钟,RNA将在管底形成细小沉淀(约芝麻大小)。
c)小心吸弃上清液,注意不要吸弃RNA沉淀。
7、第二次清洗
a)重复第六步一次。
b)短暂快速离心,用移液枪小心吸弃残留液,注意不要吸弃沉淀。此步将有效去除残留的乙醇,否则后续反应会受到影响。
8、溶解
a)加入适量(一般为20-100μl)RNA溶解液使RNA沉淀溶解,存放于-80℃或立即使用。千万不要用真空离心法使RNA沉淀过于干燥,否则RNA将变得十分难溶。
9、检测
a)RNA完整性的电泳检测
如果需要做Northern杂交,强烈建议用户使用甲醛变性胶进行RNA电泳,因为非变性胶不能分离所有的RNA分子(BioTechniques,28:414,2000)。如果是简单检测,可以使用TAE或我们公司的SuperBuffer-2 DNA/RNA两用快速电泳液,但文献报道必须使用变性上样液(BioTechniques,9:558,1990)。普通DNA上样液不含变性剂,也没经过去RNase处理,所以最好不要使用。
尤其需要注意的是不要使用TBE进行RNA电泳,因为TBE所含硼*(代"酸")是研究多糖的经典方法----硼*(代"酸")络合法中的关键成分,硼*(代"酸")通过与RNA核糖中的羟基发生络合反应,形成RNA分子内或RNA分子间的络合复合物,使同样长度的RNA具有不同的泳动速度,电泳条带弥散,同时有大的RNA络合复合物迟留在加样孔中(一般会误以为是基因组DNA污染)。RNA分子内或RNA分子间的络合物的形成的多少和比例又与硼*(代"酸")与RNA的数量比例有关,而RNA样品中污染的其他多糖(如植物中提取的RNA)也会参与此反应,使硼*(代"酸")对RNA电泳的影响更复杂,所以TBE对RNA电泳的影响没有规律性和重复性。有的样品可以使用有的又不行,最好是避免使用。
由于动物细胞中70-80%的RNA为rRNA,后者又由28S(约4800nt),18S(约1900nt)和5.8S(约120nt)三种组成,所以变性胶电泳后应该在UV下看见三条清晰的rRNA带。由于核酸长度与结合EB的数量成正比(当然还与RNA的二级结构有关,双链部分结合能力比单链部分强),所以28S rRNA条带的荧光强度一般比18S rRNA条带的荧光强度强1.5-2.3倍。如果这两条rRNA带不清晰或比例小于此范围则表示RNA有降解(因为大的RNA被酶降解的可能更大)。
跟动物一样,植物果实和种子的RNA一般有三条电泳带,但植物叶片的RNA有四条或更多rRNA带,多余的RNA来源于叶片中大量存在的叶绿体。
b)RNA产量产率测定
将5-10μl RNA溶于TE缓冲液中(pH7.5-8.2之间)检测其在OD260的光吸收。通过光吸收可以得出RNA浓度(1 OD260的RNA=40μg/mL),进而计算出RNA的产量(浓度X体积)和产率(RNA产量/组织用量)。
注意不要将RNA稀释在DEPC水中检测OD260和OD280,否则光吸收比在TE中测得的低10%-15%,因为核酸光吸收跟溶液pH相关,而DEPC水中的DEPC高压分解后产生的CO2与水反应生成碳酸,使溶液pH降低进而降低RNA的光吸收。RNA的产率还随组织的营养状态和组织的种类不同而不同,100mg种子的RNA产量一般为100-120μg,100mg叶片为30-60μg,100mg果实为20-40μg。
c)RNA纯度测定
无污染的总RNA的OD260/OD280一般在1.8-2.1之间(具体数值与其碱基组成和溶液成分等多种因素有关),OD260/OD230一般在2.0-2.3之间,如果低于或高于此范围则分别表示样品可能有蛋白质或多糖的污染,但一般不影响RT-PCR等反应。蛋白质污染可以通过酚/*仿抽提一次然后酒精沉淀去除,DNA和多糖污染可以分别用我们公司的DNA Scavenger和PS Scavenger去除。

疑难解答:
Q:上样孔里的红色荧光物一定是污染的基因组DNA吗?
A:不是。用TAE或TBE电泳液和非变性胶电泳RNA时容易产生此现象,我们公司初步研究发现大部分红色荧光物是变性不充分的单链RNA通过碱基互补或通过硼*(代"酸")络合(如果使用TBE作电泳液的话)形成的复合物,加RNase处理后,这些红色荧光物一般会消失。为避免此现象,建议最好使用甲醛变性胶电泳。如果需要使用非变性胶,也必须在上样前使RNA变性。使用我们公司优化的上样/变性/染色三用溶液RNAload可以使RNA在非变性胶上电泳时也有较好分辨率。使用非变性胶时,可以使用TAE或超快电泳液SuperBuffer-2,最好不要使用TBE缓冲液,因为TBE中的硼*(代"酸")能与RNA的多羟基形成复合物,RNA很难形成锐利的条带。
Q:如何确认和去处除污染的基因组DNA?
A:如果怀疑有DNA污染,可以用RNase处理RNA样品,然后再电泳。如果上样孔里的红色荧光物不消失,则表示是基因组DNA污染。进一步确认可以使用PCR扩增法。去除污染的DNA可以使用非酶的DNA去除剂DNA Scavenger或RNase-free DNase,由于RNase-free DNase一般都有残留的RNase污染,所以必须严格按照厂家提供的使用手册进行操作。
Q:为何提取的RNA电泳时带型不清楚或根本没有条带?
A:可能原因:
  1、电泳没有使用MOPS缓冲液+甲醛变性胶;
  2、没有使用RNA专用的上样液或使用的RNA专用的上样液放置时间过长;
  3、植物组织样品中RNase很多,可以使用RVC(部分植物果实需要此处理);
  4、植物组织中含多酚等影响提取的物质(如松柏等植物),可以在溶液A中加入终浓度为0.1 M的硼*化*。


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