动物医学实验【大鼠心肌梗死/脊髓损伤模型】

服务名称 ：动物医学实验【大鼠心肌梗死/脊髓损伤模型】

提供商 ：誉嘉生物

大鼠心肌梗死/脊髓损伤模型

【实验原理】
SD大鼠心肌梗死模型 通过结扎左冠状动脉前降支（LAD）制作心肌梗死模型。 大鼠脊髓损伤实验动物模型 脊髓损伤模型种类繁多，各有其优缺点，在应用时应根据具体实验研究目的和条件作出科学的选择。目前，国内脊髓损伤实验研究最常选用的动物是大白鼠、兔、猫、犬。体型较大的动物在实际的实验操作中存在如下不利因素：手术操作步骤相对复杂，切口容易感染，容易死于术后的脊髓损伤并发症，一定程度影响了实验结果。大鼠作为一种价格便宜、容易饲养的动物，作为制作脊髓损伤模型还有如下特点：再现性好；临床相关性好；与人类高度同源性；重复性强；适应范围广；操作简单；死亡率低等。

【应用简介】
SD大鼠心肌梗死模型 实验建立的标准化心肌模型可进一步用于心室重构机制和治疗方面的研究,甚至对各相关领域研究的相互参考和借鉴都能起到重大作用。 大鼠脊髓损伤实验动物模型 脊髓损伤的治疗作为临床上的一大难题，建立良好的动物模型对于该项疾病的研究至关重要。脊髓损伤的修复与再生成为研究重点，只有建立标准的、可重复性高的动物模型才能进行治疗方面的进一步研究。

【实验方法】
SD大鼠心肌梗死模型制备流程 实验鼠称重，7%水合氯醛按5ml/kg 行腹腔注射麻醉。颈部、胸部备皮，用酒精棉球对手术区消毒，颈部正中切口，钝性分离两侧肌肉暴露气管，于大鼠口腔行气管插管后接小动物呼吸机，保持呼吸稳定后在左胸前第3、4肋间作横切口，依次钝性分离各层肌肉，小心剪开肋间肌，暴露心脏后撕破心包膜，挤出心脏在左心耳的右缘下1-2mm处、肺动脉圆锥左缘处用圆针穿过左冠状动脉前降支下方的心肌表层，用5-0线结扎，结扎成功后，可观察到结扎血管以下心室壁稍变白，立即将心脏放入胸腔并缝合胸腔，用注射器将胸腔内空气抽出，确定无开放性气胸后依次缝合胸壁各层组织。大鼠术后恢复自主呼吸后拔除气管插管。 大鼠脊髓损伤实验动物模型制备流程     实验鼠自购回后动物房12h-12h昼夜交替，保持大鼠自由饮水、进食，温度23-25℃，适应性喂养一周后进入实验。 Wistar大鼠称重，采用7%水合氯醛5ml/kg腹腔注射麻醉后，俯卧位固定于手术台上，以T10棘突为中心，备皮，酒精消毒后取背部正中切口，长约2cm，依次切开皮肤、皮下组织，切开并分离脊柱两侧肌肉及筋膜，显露T9~T11椎体棘突及椎板。然后用止血钳小心咬除T10及附近棘突与椎板，暴露并保持硬脊膜的完整。用2.2×5mm弧形面与脊髓接触，压迫为质量50g的重物，压迫时间5min，大鼠双后肢瘫痪证明造模成功。逐层缝合肌肉及皮肤。

【案例展示】

（SD大鼠心肌梗死模型）

（大鼠脊髓损伤实验动物模型）

【常见问题】
①器械：动物呼吸机。开胸制作心梗模型，维持呼吸至关重要。虽然据说某些牛人可以不用呼吸机，但是我想这是经验积累的结果，开始时必然要用；况且需要看此说明的人应该没有牛到这个程度。当然，如果你经费异常充足，不在乎死亡成千上万的大鼠也可以。显微器械，最主要的是针持，大鼠胸腔、心脏均很小，常规器械无法进入胸腔缝扎。其他手术器械以眼科器械为主。
②动物：应选择成年健康大鼠，耐受性较好。最重要的是要充分利用每一只动物，包括死亡的大鼠。许多人都知道制作大鼠模型需要多练习，但是练习不是买一大批大鼠，不停地缝扎，然后不停地扔掉死的大鼠；当然，制作心梗模型死亡一些大鼠是很正常的事情。练习的前提是对大鼠解剖及操作过程的熟悉，如果可能的话，最好先找一份大鼠的解剖图谱，熟悉手术区域的解剖结构；同时研究实验流程，熟悉每一个实验步骤。大鼠死亡后，不要急着扔掉，利用它练习每一个你不熟悉的操作步骤，直到熟练为止。
③实验者：实验者必须具有一种平和的、耐得住寂寞的心态，制作模型需要时间，尤其是早期，需要耐心、仔细的摸索；必须对每一个步骤进行认真地研究。最熟练的制作者做一只大鼠模型也需要30到40分钟的时间，加上准备及扫尾的时间，制作十只模型就需要一天的时间，如果你废寝忘食多用用功也可能做到15只左右，这样一天下来腰酸背痛是必然的，你能坚持多久？不熟练的话，一只就要两、三个小时；同时还要看着大鼠在你的手中死亡，这是很揪心的事情。因此，实验者必须具备良好的心态，急于求成、难耐寂寞者不适合做此实验。 本文系气管切开插管，缝扎LAD制作模型。亦有经口插管，液氮冷冻制作模型。
【服务流程】

公司介绍

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