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规格 : QR1015-50T/ QR1015-100T/ QR1015-200T
试剂盒内容试剂盒组成 | QR1015-50T | QR1015-100T | QR1015-200T |
RNaseA | 400 μL | 800 μL | 1600 μL |
溶液Ⅰ | 30 mL | 60 mL | 120 mL |
溶液Ⅱ | 30 mL | 60 mL | 120 mL |
溶液Ⅲ | 40 mL | 80 mL | 160 mL |
漂洗液Ⅰ | 24 mL | 48 mL | 96 mL |
漂洗液Ⅱ | 15 mL | 15 mL×2 | 15 mL×4 |
洗脱液 | 30 mL | 60 mL | 120 mL |
吸附柱 | 50个 | 100个 | 200个 |
收集管 | 50个 | 100个 | 200个 |
说明书 | 1份 | 1份 | 1份 |
产品说明:
本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞,根据离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的 DNA的原理特异性提取质粒DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料能高效、专一地吸附DNA,可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。溶液Ⅰ在使用前先加入RNaseA(将试剂盒中提供的 RNaseA 全部加入),混匀,置于 2-8℃保存。如非指明,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
操作步骤(仅供参考):
1、取10-15mL细菌培养物,12000rpm离心1min,尽量吸除上清(可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个2mL 离心管中)。
2、向留有菌体沉淀的离心管中加入 500μL 溶液Ⅰ(请先检查是否已加入RNaseA),使用移液器或旋涡振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意:如果菌块未彻底混匀,会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。
3、向离心管中加入500μL溶液Ⅱ,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意:混匀一定要温和以免污染细菌基因组DNA,此时菌液应变得清亮粘稠,作用时间不要超过5min,以免质粒受到破坏。
4、向离心管中加入700μL溶液Ⅲ,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮沉淀。12000rpm离心10 min,用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中,尽量不要吸出沉淀。注意:溶液Ⅲ加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
5、将上一步所得上清液加入吸附柱中(吸附柱加入收集管中),空温放置2min,12000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
6、向吸附柱中加入500μL漂洗液Ⅰ(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
7、向吸附柱中加入700μL漂洗液Ⅱ(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
8、向吸附柱中加入700μL漂洗液Ⅱ,12000rpm 离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
9、12000rpm离心2min,将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR等。
1、取10-15mL细菌培养物,12000rpm离心1min,尽量吸除上清(可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个2mL 离心管中)。
2、向留有菌体沉淀的离心管中加入 500μL 溶液Ⅰ(请先检查是否已加入RNaseA),使用移液器或旋涡振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意:如果菌块未彻底混匀,会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。
3、向离心管中加入500μL溶液Ⅱ,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意:混匀一定要温和以免污染细菌基因组DNA,此时菌液应变得清亮粘稠,作用时间不要超过5min,以免质粒受到破坏。
4、向离心管中加入700μL溶液Ⅲ,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮沉淀。12000rpm离心10 min,用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中,尽量不要吸出沉淀。注意:溶液Ⅲ加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
5、将上一步所得上清液加入吸附柱中(吸附柱加入收集管中),空温放置2min,12000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
6、向吸附柱中加入500μL漂洗液Ⅰ(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
7、向吸附柱中加入700μL漂洗液Ⅱ(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
8、向吸附柱中加入700μL漂洗液Ⅱ,12000rpm 离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
10、将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加100-300μL经65℃水浴热的洗脱液,室温放置2min,12000rpm离心1min。
11、为了增加质粒的回收效率,可将得到的洗脱液重新加入吸附柱中,室温放置2min,12000rpm离心1min。
注意事项:
1、使用前请先检查溶液Ⅱ和溶液Ⅲ是否出现混浊,如有混浊现象,可在 37℃水浴中加热几分钟,待溶液恢复澄清后再使用。溶液Ⅱ、溶液Ⅲ、漂洗液Ⅰ和漂洗液Ⅱ使用后应立即拧紧盖子。
2、洗脱缓冲液体积不应少于100μL,体积过小影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围),pH值低于7.0会降低洗脱效率,DNA产物应保存在-20℃,以防 DNA 降解。
3、DNA浓度及纯度检测:得到的质粒DNA纯度与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。得到的DNA可用琼脂糖疑胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50ug/mL双链DNA、40ug/mL单链DNA。OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响吸光值,但并不表示纯度低。
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