酵母三杂交文库筛选

▼服务简介

酵母三杂交系统，用于检测体内配体-受体的相互作用。该系统改编自酵母双杂交系统，其中结合了第三种合成杂交配体，以地塞米松和FK506共价连接的异源二聚体作为杂合配体，验证了该系统的可行性。

▼应用场景

酵母三杂交文库的构建是筛库的前提，可用于目的蛋白的互作蛋白大规模筛选分析蛋白质间的相互作用，是现在分子生物学与生物化学常用的手段。

▼实验原理

酵母杂交系统的建立得益于对真核生物调控转录起始过程的认识：真核生物基因的转录由转录调控因子和启动子共同调节，转录调控因子由两个结构域组成：DNA 结合域(BD)和转录激活域(AD)，转录调控因子依靠 DNA 结合域结合到基因的上游激活序列( U A S ) ，其转录激活域则激活下游基因的表达，这两个结构域分开后仍各具功能，但不具有转录调控作用，只有两者通过适当途径在空间上较为接近时，才能恢复转录调控作用。酵母双杂交系统将蛋白 X、Y 分别与特定转录调控因子的 DNA 结合域、转录激活域杂合形成两个融合蛋白(X-BD，Y-AD)，当 X 与 Y 相互作用时，与 X、Y 融合的 BD ，AD 在空间上接近，从而恢复该特定转录调控因子的转录激活作用。被激活表达的基因称为报告基因，常为lac Z(β-半乳糖苷酶基因)和His3(组氨酸基因)。常用的 DNA 结合域有 Gal4DB(酵母 Gal4 的 DNA结合域)，转录激活域有 Gal4AD(酵母 Gal4 的转录激活域)，酵母三杂交系统中，BD 与 AD 的相互靠近由组分 Z 桥联 X 和 Y 来完成。组分 Z可为蛋白、R N A 或小分子化合物，根据组分 Z 不同，酵母三杂交系统有不同的功能。

▼服务内容

▼常见问题

1.Clontech文库是否可行？

clontech和invitrogen体系是两家公司的产品，分别用的是SMART和Gateway重组方法。判定文库质量有3个标准，库容，重组率，平均插入片段大小。clontech体系存在很多技术上的弊端，现在已经慢慢被淘汰了。比如合成cDNA第二链时用的是PCR方法，一个物种一般有几万个基因，用一种酶把几万个基因全部扩增到是很难实现的，就像我们平时克隆一个基因经常出现有的酶可以PCR扩增到，有的酶扩不到。而且PCR循环数越多，高拷贝和易扩增的基因冗余度越高，低拷贝和不易扩增的基因慢慢就会丢失，所以很难反映一个物种中基因的真实情况。而invitrogen体系在合成cDNA第二链时是以第一链为模板，通过E.coli.DNA Ligase，E.coli.DNA Polymerase I，T4 DNA Polymerase 等不同酶扩增，能够忠实反映第一链的情况，也就是能够忠实反映mRNA的情况，保证mRNA没有降解，文库构建已经成功一半了。不会造成基因冗余和不均一化的情况。另外由于clontech合成cDNA第二链是PCR的方法，PCR扩增的局限性导致平均插入片段长度较短，一般在500bp左右，这500bp可能包括一部分CDS和UTR，甚至全部都是UTR。如果筛库筛到了，可能就是假阳性，完全没有编码蛋白。invitrogen体系平均插入片段大于1kb，大大减少了全部是UTR的状况，降低了假阳性。clontech体系是线性化质粒一步重组，而invitrogen体系是环装质粒两步重组，线性化质粒的重组率是低于环装质粒的，所以clontech建库后会发现空载率比较高。而环装质粒重组效率高，另外在质粒上加了致死基因，空质粒不会在大肠DH10B中生长，大大降低了空质粒情况。综上，invitrogen体系在库容，重组率，平均插入片段大小方面表现都是优于clontech体系。

2.为什么有的clontech体系平均插入片段大于1kb？

正常做是不容易达到的，因为PCR第二链会导致片段小。在cDNA分级分离这一步不采用过柱的方法，直接跑胶切下1kb或1.5kb以上的片段往下重组。这种方法提高了片段大小，但是降低了库容。而invitrogen体系不需要这么做，片段较大，直接过柱除去大部分400-500bp小片段就可以了。

3.酵母双杂交筛库用三缺是否可行？

空AD和空BD质粒共转三缺都会长克隆，这么做筛库会造成很高的假阳性。不过确实可以光速交付结果。

4.酵母单杂交筛库高通量测序是否可行？

酵母单杂交筛库长出的单克隆，正常操作是直接PCR，单条带且片段较大的送测序。多条带的一般舍弃不用，无法确定哪个是结合蛋白，同时作用还是单独作用（通过划线分离出单条带的单克隆是可行的，但是很繁琐，单杂长的克隆较多，一般没必要在多条带的单克隆上纠结）。而高通量测序无法分辨测序结果是单条带或多条带的单克隆，继而造成假阳性偏高。

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