牛病毒性腹泻病毒(BVDV)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

牛病毒性腹泻病毒(BVDV)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

价格: ¥2750

品牌:YLKBIO

货号:YLK-PCR0282

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产品详情

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库存 :100

英文名 :Bovine Viral Diarrhea Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

CAS号 :

保质期 :1年

供应商 :优利科(上海)生命科学有限公司

保存条件 :-20℃

规格 :50T

牛病毒性腹泻病毒(BVDV)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)
 

【产品名称】

商品名称:牛病毒性腹泻病毒(BVDV)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)
Name :Bovine Viral Diarrhea Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】50T/盒

【预期用途】

牛病毒性腹泻是由牛病毒性腹泻病毒(BVDV)引起的一种传染病,可引起许多临床症状和一些疾病,包括繁殖障碍、呼吸综合征、先天性缺陷、肠炎、持续感染
(PI)和黏膜病(MD)等,易感动物除牛以外,还包括骆驼、绵羊、山羊、猪、鹿及多种野生反刍动物[1]。病牛的分泌物、排泄物、血液和脾脏等都含有病毒,以直接接触或间接接触方式传播[2-3]。
本试剂盒适用于检测的牛的肠粘膜、肠系膜淋巴结组织、排泄物等标本中牛病毒性腹泻病毒 RNA,适用于牛病毒性腹泻病毒感染的辅助诊断。

【检验原理】

本试剂盒根据牛病毒性腹泻病毒基因设计特异性引物和荧光探针,用一步法荧光RT-PCR 技术对牛病毒性腹泻病毒 RNA 进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。


【试剂组成】

名         称 规         格
酶液 50μL×1 管
BVDV 反应液 500μL×2 管
BVDV 阳性质控品 50μL×1 管
阴性质控品 250μL×1 管
注:
  1. 不同批号试剂不能混用。
  2. 试剂盒内各试剂组份足够包装规格所标示的检测次数。

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

【适用仪器】

ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

【标本采集】

病死或扑杀牛,取肠粘膜、肠系膜淋巴结组织;待检活牛,取排泄物,放入 1mL50%
甘油生理盐水中。

【保存和运输】

上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

【使用方法】

  1. 样品处理(样本处理区)
    1. 样本前处理
每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研 磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中, 8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;排泄物:取 0.5g 于 1.5mL 灭菌离心管中,加入 1mL 生理盐水涡旋振荡,8000rpm 离心 2min,取上 清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。
    1. RNA 提取
推荐采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的 RNA 提取试剂盒(离心柱提取法),请按照试剂盒说明书进行操作。
  1. 试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
试剂 BVDV 反应液 酶液
用量 20μL 1μL
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。
  1. 加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的 RNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
  1. PCR 扩增(核酸扩增区)
    1. 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
 
    1. 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;荧光通道选择:
检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
    1. 推荐循环参数设置:
步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
1 1 cycle 42℃ 20min
2 1 cycle 95℃ 10min
3 40 cycles 94℃ 15sec
55℃ 30sec
  1. 结果分析判定
    1. 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
    1. 结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;
可疑:检测通道 35<Ct 值≤38,建议重复检测,如果检测通道仍为 35<Ct 值≤
38,且曲线有明显的增长曲线,判定为阳性,否则为阴性; 阴性:样本检测结果 Ct 值>38 或无 Ct 值。
  1. 质控标准
阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
  1. 检测方法的局限性
  • 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
  • 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
  • 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
  • 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
  • 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
  • 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
  • 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
 

【注意事项】

  • 所有操作严格按照说明书进行;
  • 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
  • 反应液应避光保存;
  • 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
  • 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
  • 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
  • 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
  • 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

【参考文献】

  1. 郭春娟. 牛病毒性腹泻/粘膜病荧光定量 RT-PCR 检测方法的建立[J]. 新疆农业大学, 2012.
  2. 王研. 牛病毒性腹泻黏膜病实用诊断方法的建立[J]. 西南民族大学, 2013.
  3. 吉林省质量技术监督局. DB22/T 1608-2012 牛病毒性腹泻/粘膜病病毒荧光
RT-PCR 检测方法[S].




 

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