猪附红细胞体(SEP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

猪附红细胞体(SEP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

价格: ¥2800

品牌:YLKBIO

货号:YLK-PCR0130

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库存 :100

英文名 :Swine Eperythrozoon Detection Kit (Real-Time PCR Method)

CAS号 :

保质期 :1年

供应商 :优利科(上海)生命科学有限公司

保存条件 :-20℃

规格 :50T

猪附红细胞体(SEP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)
 
 

【产品名称】

通用名称:猪附红细胞体(SEP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)
Name :Swine Eperythrozoon Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】48T/盒

【预期用途】

猪附红细胞体可引起猪出现发烧、皮肤及内脏器官出血、贫血、呼吸道症状及母猪繁殖障碍等症状,造成猪群生产性能下降,免疫力低下、死亡率增加[1,2]。猪附红细胞体可以引起猪群长期的持续性感染和潜伏感染,且易与其他病原混合感染,当与其他病原混合感染后可极大地增加患猪的死亡率,同时也增加了临床上对该病的诊断难度。
本试剂盒适用于检测全血等样本中的猪附红细胞体,用于猪附红细胞体感染的辅助诊断。

【检验原理】

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计猪附红细胞体特异性引物和探针,用荧光 PCR 技术对猪附红细胞体的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

【试剂组成】

名         称 规         格
核酸提取液 1.5mL×2 管
酶液 50μL×1 管
SEP 反应液 1.0mL×1 管
SEP 阳性质控品 50μL ×1 管
阴性质控品 250μL ×1 管
说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融少于 5 次,有效期 12 个月。

【适用仪器】

ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

【标本采集】

用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管

【保存和运输】

上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

【使用方法】

  1. 样品处理(样本处理区)
    1. 样本前处理
取抗凝血下层血细胞 50μL,加入 100μL 双蒸水吹匀
    1. DNA 提取
      1. 对上述处理好的标本加入 50μL 核酸提取液,100℃恒温处理 10min,13,000 rpm 离心 5min,取上清液转移至新的 1.5mL EP 管,-20℃保存;
      2. DNA 的提取也可以采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的 DNA 提取试剂盒
(离心柱提取法),请严格按照试剂盒说明书进行操作。
  1. 试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
试剂 SEP 反应液 酶液
用量(样本数为 N) 20μL 1μL
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。

  1. 加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
  1. PCR 扩增(核酸扩增区)
    1. 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
    2. 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;

荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM,  淬灭通道(Quencher Dye)NONE,请勿选择 ROX 参比荧光。
    1. 推荐循环参数设置:
步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
1 1 cycle 95℃ 10min
2 40 cycles 94℃ 15sec
55℃ 30sec
  1. 结果分析判定
    1. 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
    1. 结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;
可疑:检测通道 35<Ct 值≤38,建议重复检测,如果检测通道仍为 35<Ct 值
≤38,且曲线有明显的增长曲线,判定为阳性,否则为阴性; 阴性:样本检测结果 Ct 值>38 或无 Ct 值。
  1. 质控标准
阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
  1. 检测方法的局限性
  • 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
  • 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
  • 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
  • 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
  • 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
  • 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
  • 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

【注意事项】

  • 所有操作严格按照说明书进行;
  • 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
  • 反应液应避光保存;
  • 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
  • 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
  • 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
  • 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
  • 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

【参考文献】

  1. 郑丽艳. 猪附红细胞体病诊断方法的研究[J]. 山东农业大学, 2006.
  2. 于龙政. 猪附红细胞体病 PCR 诊断方法的建立[J]. 延边大学, 2006.

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