一. 实验原理

SDS-PAGE是对蛋白质进行量化，比较及特性鉴定的一种经济、快速、而且可重复的方法。该法是依据混合蛋白的分子量不同来进行分离的。

SDS是一种去垢剂，可与蛋白质的疏水部分相结合，破坏其折叠结构，并使其广泛存在于一个广泛均一的溶液中。SDS蛋白质复合物的长度与其分子量成正比。在样品介质和凝胶中加入强还原剂和去污剂后，电荷因素可被忽略。蛋白亚基的迁移率取决于亚基分子量。

二. 试剂和器材

试剂：

1. 5x样品缓冲液（10ml）：0.6ml 1mol/L的Tris-HCl（pH6.8），5ml 50%甘油，2ml 10%的SDS，0.5ml巯基乙醇，1ml 1%溴酚蓝，0.9ml蒸馏水。可在4℃保存数周，或在-20℃保存数月。

2. 凝胶贮液：在通风橱中，称取丙烯酰胺30g，甲叉双丙烯酰胺0.8g，加重蒸水溶解后，定容到100ml。过滤后置棕色瓶中，4℃保存，一般可放置1个月。

3. pH8.9分离胶缓冲液： Tris 36.3g ，加1mol/L HCl 48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH8.9，定容至100ml， 4℃保存。

4. pH6.7浓缩胶缓冲液： Tris 5.98g ，加1mol/L HCl 48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH6.7，定容至100ml， 4℃保存。

5. TEMED（四乙基乙二胺）原液

6.10%过硫酸铵（用重蒸水新鲜配制）

7. pH8.3 Tris-甘氨酸电极缓冲液：称取Tris

6.0g，甘氨酸28.8g，加蒸馏水约900ml，调pH8.3后，用蒸馏水定容至1000ml。置4℃保存，临用前稀释10倍。

8. 考马斯亮蓝G250染色液：称100mg考马斯亮蓝G250，溶于200ml蒸馏水中，慢慢加入7.5ml 70%的过氯酸，最后补足水到250ml，搅拌1小时，小孔滤纸过滤。

器材：电泳仪，电泳槽，水浴锅，摇床。

三. 实验操作

（一）样品制备

将蛋白质样品与5X样品缓冲液（20ul+5ul）在一个Eppendorf管中混合。放入100℃加热5～10min，取上清点样。

（二）分离胶及浓缩胶的制备

1 将玻璃板、样品梳、Spacer用洗涤剂洗净，用ddH₂O冲洗数次，再用乙醇擦拭，晾干；

2 将两块洗净的玻璃板之间加入Spacer，按照Bio-Rad Mini Ⅱ/Ⅲ说明书提示装好玻璃板；

3 按如下体积配制10%分离胶8.0 ml，混匀；

ddH₂O            3.0 ml
　　1.0 mol/LTris-HCl pH=8.8         2.1 ml
　　30% Acr-Bis            2.8 ml
　　10% SDS                 80 ul
　　10%AP                    56 ul
　　TEMED                   6 ul

4 向玻璃板间灌制分离胶，立即覆一层重蒸水，大约20min后胶即可聚合；

5 按如下体积配制6%浓缩胶3.0ml，混匀；ddH₂O 1.0 mol/LTris-HClpH=6.8 30% Acr-Bis

2.0 ml              400 ul            600 ul
10% SDS        10% AP         TEMED
36ul                  24ul                 4ul   

6 将上层重蒸水倾去，滤纸吸干，灌制浓缩胶，插入样品梳；

7 装好电泳系统，加入电极缓冲液，上样20μl；

8 稳压200V，溴酚蓝刚跑出分离胶时，停止电泳，约需45 min～1hr.

9 卸下胶板，剥离胶放入染色液中，室温染色1～2hr；加入脱色液，置于80rpm脱色摇床上，每20min更换一次脱色液（10ml冰乙酸；45ml乙醇；45ml蒸馏水）至完全脱净。