腺病毒介导EGFP基因转染神经干细胞
实验原理
腺病毒是一种大分子（36 kb）双链无包膜DNA病毒。它通过受体介导的内吞作用进入细胞内，然后腺病毒基因组转移至细胞核内，保持在染色体外，不整合进入宿主细胞基因组中。
本实验从新生SD大鼠海马组织中分离神经干细胞，并通过观察携带EGFP基因的腺病毒（Ad/ EGFP）转染NSCS后EGFP表达规律及转染对NSCS的活力、增殖、分化等的影响，探讨EGFP作为NSCS的示踪标志物的可行性，为进一步的NSCS移植研究提供体外研究基础。
实验材料
试剂/试剂盒
实验步骤
一、NSCS的分离、培养及鉴定
取新生大鼠置于0.5%碘伏中消毒，取脑，分离海马，剥离脑膜血管，将海马组织移入含有2%B27的高糖DMEM/F12培养液中，尽量将组织剪碎，轻轻吹打制成细胞悬液，400目筛网过滤，台盼蓝染色，细胞计数，以2×106个/L接种到6孔培养板内，最后加入EGF（终浓度20 μg/L）和bFGF（终浓度20 μg/L），置37℃、5% CO2平衡湿度培养箱中。每2——3天半量换液1次，每7——10天传代1次。对第3代培养7天的细胞球用Nestin免疫荧光染色法进行鉴定，荧光倒置相差显微镜观察拍照。
二、Ad/EGFP转染NSCS
把第3代培养7天的细胞按2×105个/孔接种到24孔板，每孔加入DMEM/F12+EGF+bFGF培养液1 ml，转染前1天半量换液。实验分为5组，感染复数（multiplicity of infection，MOI）分别为0∶1（对照组）、10∶1、20∶1、50∶1、100∶1，每组设8孔。根据感染复数计算加入所需腺病毒悬液的体积数，在EP管中将所需的腺病毒悬液与无血清的DMEM/F12培养液混合，将混合液按照分组分别加入到每组细胞中，每孔0.2 ml。将24孔板置于37℃、5%CO2培养箱中培养，4 h后用DMEM/F12清洗细胞2次，弃病毒残液。每8 h观察EGFP的表达情况，常规半量换液。转染后48 h，在200倍荧光显微镜下，随机选取5个视野，分别计算绿色荧光阳性细胞百分数，用以代表Ad/EGFP对NSCS的转染效率。
三、Ad/EGFP体外转染对神经干细胞增殖的影响
各组分别在第7天、第14天、第21天细胞传代时各取100 μl，用台盼蓝染色并计算细胞活力，计算公式为 ：细胞活力（%） = （细胞总数-死亡细胞数）/细胞总数×100%。并在100倍显微镜下，各组选取培养板4角的4个区域及中央1个区域进行神经干细胞球的计数。用Nestin荧光免疫细胞化学染色法对培养的细胞球进行鉴定。
四、Ad/EGFP体外转染对神经干细胞分化的影响
对照组和转染组的神经干细胞球在培养第7天时用10%FBS诱导分化，在第14天行免疫细胞化学反应。每组任选3孔，每孔随机选择5个视野，相差显微镜下400倍视野计算细胞总数、β-Ⅲ tubulin和GFAP阳性细胞数，同时计算阳性细胞数占细胞总数的百分比；藉此区分神经元、星形胶质细胞，以鉴定转染Ad/EGFP的NSCS的多分化潜能。
五、统计学处理
计量资料以x±s表示，用单因素方差分析及两两比较检验；计数资料应用χ2检验。数据应用SPSS10.0进行统计学处理。检验水准：α=0.05 。
