实验方法

蛋白激酶C异构体分析实验

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蛋白激酶的分析是使用标记的供体底物,当酶样品中含有磷酸转移酶活性时,蛋白 质或多肽受体底物中标记物的积累就很容易被检出。


内容来源于《精编分子生物学实验指南(第五版)》


基本方案

实验原理

实验步骤

1. 每个分析反应按以下比例将各反应组分加入 1.5 ml 微量离心管中:

4 μl 5 × PKC 反应缓冲液

1 μl 10 mg/ml 组蛋白 H1

1 [γ-32P] ATP 溶液(ATP 终浓度为 5 mmol/L,放射活性为 5 μCi/μl)

0~14 μl 水

盖好离心管,放入 30℃ 水浴温育 10 min。

三个反应为一组设立无底物和酶的对照。每个反应的容积为 20 μl。在步骤 2 中加入水的量取决于所用酶样品的多少。


2. 加入 1~14 μl 有 PKC 活性的酶样品到预热的反应混合液中,开始反应。


3. 30℃, 温育 10 min。


4. 按不同的分析方法加入适当的试剂停止反应:加入 20 μl 10 % 预冷的 TCA 进行 TCA沉淀,10 μl 或 20 μl 预冷的 2 × SDS - PAGE 样品缓冲液进行电泳分析。可用 10 μl 的反应产物点膜,使样品吸附在 P81 磷酸纤维素膜上。用那些方法中的一种继续进行分析。

注意事项

其他

有 PKC 活性的酶样品(见辅助方案 1)

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