实验方法

激光扫描共聚焦显微镜使用说明

难度系数: 3.6

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激光扫描共聚焦显微镜可以:(1)光切片扫描、3D图像处理、时间序列拍摄成像;(2)细胞、绿荧光蛋白、生物荧光样品观察分析;(3)荧光原位杂交分析。

共聚焦显微镜激光扫描法

实验原理

激光共聚焦扫描显微镜(Confocal laser scanning microscope,CLSM)用激光作扫描光源,逐点、逐行、逐面快速扫描成像,扫描的激光与荧光收集共用一个物镜,物镜的焦点即扫描激光的聚焦点,也是瞬时成像的物点。

由于激光束的波长较短,光束很细,所以共焦激光扫描显微镜有较高的分辨力,大约是普通光学显微镜的3倍。系统经一次调焦,扫描限制在样品的一个平面内。调焦深度不一样时,就可以获得样品不同深度层次的图像,这些图像信息都储于计算机内,通过计算机分析和模拟,就能显示细胞样品的立体结构。

实验材料

细胞

试剂/试剂盒

荧光染料 培养基

实验步骤

一、观察及仪器操作 
 
1.  开启仪器电源及光源

一般先开启显微镜和激光器,再启动计算机,然后启动操作软件,设置荧光样品的激发光波长,选择相应的滤光镜组块。以便光电倍增管(photo multiplier tube,PMT)检测器能得到足够的信号结果。使用汞灯的注意事项同普通荧光显微镜。
 
2.  设置相应的扫描方式
在目视模式下,调整所用物镜放大倍数,在荧光显微镜下找到需要检测的细胞。切换到扫描模式,调整双孔针和激光强度参数,即可得到清晰的共聚焦图像。
 
3.  获取图像
选择合适的图像分辨率,将样品完整扫描后,保存图像结果即可。
 
4.  关闭仪器
仪器测定样品结束后,先关闭激光器部分,计算机仍可继续进行图像和数据处理。若要退出整个激光扫描共聚焦显微镜系统。则应该在激光器关闭后,待其冷却至少10分钟后再关闭计算机及总开关。
 
二、获取三维图像  

激光扫描共聚焦显微镜具有细胞“CT”功能,因此,它可以在不损伤细胞的情况下,获得一系列光学切片图像。选用“Z-Stack"模式,即可实现此项功能。
 
1.  开启“Z-Stack”选项。
 
2.  确定光学切片的位置及层数。
 
3.  启动“Start”,获得三维图像。
 
三、获取时间序列图像  

共聚焦显微镜的"Time-Series"功能,可以自动在实验者规定的时间内按照设定的时间间隔获取图像。只需设定所需的时间间隔以及所需图像数量,开启“Start T”功能键,即可进行实验。“Time-Series”功能大大减轻了实验者的劳动强度,对于荧光漂白恢复和钙离子成像等实验非常实用。
 
 

注意事项

1.  仪器周围要远离电磁辐射源;
 
2.  环境无震动,无强烈的空气扰动;
 
3.  室内具有遮光系统,保证荧光样品不会被外源光漂白;
 
4.  环境清洁;
 
5.  控制工作温度在5~25℃。

其他

激光扫描共聚焦显微镜可测定的样品种类很多.包括生物材料、组织(切片)、细胞(亚细胞)结构等。样品中荧光的来源主要有如下几种:自发荧光(autofluorescence)、荧光染色、免疫荧光、荧光蛋白、诱发荧光(induced fluorescence)及酶致荧光(enzymatically produced fluorescence)等等。其中大部分荧光素的激发和发射波长均可在仪器自带软件的染料信息库中找到。

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