实验方法

α-、 β-和 γ-干 扰 素 诱 导 的 抗 病 毒 活 性 的 检 测

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实验所用的细胞是小鼠的L 929成纤维细胞,这种细胞具有对干扰素和V S V 的高敏感性。细胞应当来源于已经建立此项检测的实验室而非商业化的途径。持续而稳定的细胞传代有益于检测结果的可信度。但是以每周一次传代的频率持续4〜6 个月的传代后 ,达 到 l〇〇 %C P E 的时间会延长而且终点会变得较为模糊。当有此种现象发生时,应更换新的细胞株。
作者:J.E.科利根等,译者:曹雪涛等,本实验来自「精编免疫学实验指南」

α-、 β-和 γ-干 扰 素 诱 导 的 抗 病 毒 活 性 的 检 测

实验原理

实验步骤

基 本 方 案 小 鼠 干 扰 素 诱 导 的 抗 病 毒 活 性 的 检 测

材 料

干扰素敏感的 L 929 成纤维细胞

E M E M 培 养 基(Eagle 氏最低要求培养基)

胰酶消化液
检 测 样 品(具干扰素活性的血清或培养上清)

小鼠干扰素的参照标准品 α -干扰素、β-干扰素、 γ-干 扰 素 以 及 αβ-干扰素(从美国马里兰州贝塞斯达国家过敏与感染疾病研究院 Laughlin 博士处获得)

水 疱 性 口 炎 病 毒(vesicular stomatitis virus, V S V ; 印第安纳株)

4°C 的 EBSS (Earles 平衡盐溶液)

5 % (W V ) 福尔马林

含 0.05% (m /V ) 结 晶 紫 的 2 0 % 乙醇

1 0 0 % 甲 醇(可选)

75c m 2 的直颈组织培养瓶(Falcon 或 Costar)

8 通 道 微 量 移 液 器(固定或调整至 50M1 和 IOOiLd; Costar)

9 6 孔 平 底 微 孔 板(Falcon 或 Costar)

8 孔 吸 液 器(D r u m m o n d ; Thomas Scientific)

倒置显微镜

定 轨 摇 床(可选)

微量 滴 定 板 读 板 仪(酶联仪)(可选)

1 . 将 约 I X l O6干 扰 素 敏 感 的 L 9 2 9 成 纤 维 细 胞 悬 于 25 ml E M E M 培 养 基 中 ,接种至75 cm2 组织培养瓶。在 37°C , 6%(:〇 2 培养箱中培养约 1 周(或直至铺满培养瓶)。

2 . 向铺满细胞的培养瓶内加入 3m l 胰酶消化液,待细胞从培养瓶底脱离下来后收集获

辅 助 方 案 1 病毒培养体系的建立

附 加 材 料


辅 助 方 案 2 抗体中和实验


6 . 测定抗体制品的中和滴度,即中和掉 5 0 % 的 5U /m l 干扰素活性的抗体的最髙稀释度的倒数。

7 . 可选操作:抗体的中和活性以 U /m l 表示。效价乘 以 5 (调 整 为 中 和 5U /ml) ,再乘以 4 (调整为相对于加入的样品和细胞 4 倍稀释度的抗体),然 后 再 乘 以 5 (因为检测的体积为0.2 ml)。

备 选 方 案 人 干 扰 素 诱 导 的 抗 病 毒 活 性 的 检 测


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