实验方法

免 疫 组 织 化 学 法 实 验

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免疫组织化学(immunohistochemistry, IHCS) 是用特异性抗体检测组织切片中抗原的一种方 法 。 在鉴定蛋白质方面,IH C 有着其他技术无法比拟的独特优点,可以将抗原检测与其在组织或细胞中的定位联系起来,这对于正常或病理组织的细胞功能研究具有重要意义。 19 世 纪 40 年代末 [1] ,Coons 首先建立了免疫组织化学法,随后被广泛应用到生物学的多个领域,包括细胞功能研究、肿瘤形成过程的研究,以及感染性疾病的检测等。免疫组织化学,顾名思义,是 将 3 个重要领域连接起来: 形态学、组织化学和免疫学。本章将会重点介绍组织切片中抗原的检测,也会简单介绍细胞玻片的染色 (这种情况应称为免疫细胞化学)
作者:霍华德,本实验来自「抗体制备与使用实验指南」

免 疫 组 织 化 学 法 实 验

实验原理

载 玻 片

高质量的免疫组化结果需要组织切片与载玻片之间很好地结合,以防止由于组织黏附问题导致的试剂聚集和假染色。商品化的专门用来进行免疫组织化学染色的载玻片是经过标准化包被的。这里将介绍两种方法对常规载玻片包被以用于免疫组织化学染色。

一、聚左旋赖氨酸(poly-L-Iysine) 包被玻片法

(1) 准 备 0. l % ( w/V) 聚左旋赖氨酸水溶液(Sigma P-8920)。

(2) 将载玻片浸人溶液中。

(3) 室温干燥。

(4) 室温保存。

二、 APTS 包被破片法

(1) 准备含 2 % ( V/V) 硅烷(Sigma A-3648) 的丙酮溶液。

(2) 将载玻片浸人丙酮中 1〜5 min。

(3) 将载玻片浸人含 2 % 桂焼的丙酮溶液中 1〜5 min。

(4) 将载玻片在丙酮溶液中连续洗两次,每 次 5 min。

(5) 室温干燥并储存。

三、 细 胞 涂 片 / 离 心 细 胞 涂 片 制 备

(1) 在硅烷/聚左旋赖氨酸包被的载玻片制备细胞刮片/细胞离心涂片。

(2) 室温下干燥 30 min。

(3) 在预冷的、新鲜的丙酮中一 20°C 固 定 20 min。

(4) 室温下风干至少 15 min。

(5) 对细胞刮片/细胞离心涂片染色。

五、 注意

(1) 1 0 0 % 乙醇可替代新鲜丙酮使用;固定剂的选择取决于组织中要染色的目的抗原。

(2) 未染色的载玻片可以包被在铝箔中 ,-20°C 保存。当准备染色时:打开铝箔,取出载玻片并恢复至室温,用保存之前相同的固定剂进行后固定至少 30s ,风 干 切 片 ,在缓冲液中再水化 5 min,然后进行染色。

(3) 未染色载玻片的稳定性取决于抗原性质;一些抗原很不稳定必须涂片后立刻染色。

六、 冰 冻 切 片

(1) 切 4 个 7pm 厚的未固定的冰冻切片。

(2) 将切片置于硅烷/聚左旋赖氨酸包被的载玻片上。

(3) 将切片在空气中风干 30 min。

(4) 置于预冷至 4°C 的新鲜丙酮中,固 定 20 min。

(5) 室温风干切片至少 15 mm。
(6) 将切片染色。

七、 注意

(1) 1 0 0 % 乙 醇 可 替 代 新鲜丙酮使用;固定剂的选择取决于组织中要染色的目的抗原。

实验步骤

载 玻 片

高质量的免疫组化结果需要组织切片与载玻片之间很好地结合,以防止由于组织黏附问题导致的试剂聚集和假染色。商品化的专门用来进行免疫组织化学染色的载玻片是经过标准化包被的。这里将介绍两种方法对常规载玻片包被以用于免疫组织化学染色。

一、聚左旋赖氨酸(poly-L-Iysine) 包被玻片法

(1) 准 备 0. l % ( w/V) 聚左旋赖氨酸水溶液(Sigma P-8920)。

(2) 将载玻片浸人溶液中。

(3) 室温干燥。

(4) 室温保存。

二、 APTS 包被破片法

(1) 准备含 2 % ( V/V) 硅烷(Sigma A-3648) 的丙酮溶液。

(2) 将载玻片浸人丙酮中 1〜5 min。

(3) 将载玻片浸人含 2 % 桂焼的丙酮溶液中 1〜5 min。

(4) 将载玻片在丙酮溶液中连续洗两次,每 次 5 min。

(5) 室温干燥并储存。

三、 细 胞 涂 片 / 离 心 细 胞 涂 片 制 备

(1) 在硅烷/聚左旋赖氨酸包被的载玻片制备细胞刮片/细胞离心涂片。

(2) 室温下干燥 30 min。

(3) 在预冷的、新鲜的丙酮中一 20°C 固 定 20 min。

(4) 室温下风干至少 15 min。

(5) 对细胞刮片/细胞离心涂片染色。

五、 注意

(1) 1 0 0 % 乙醇可替代新鲜丙酮使用;固定剂的选择取决于组织中要染色的目的抗原。

(2) 未染色的载玻片可以包被在铝箔中 ,-20°C 保存。当准备染色时:打开铝箔,取出载玻片并恢复至室温,用保存之前相同的固定剂进行后固定至少 30s ,风 干 切 片 ,在缓冲液中再水化 5 min,然后进行染色。

(3) 未染色载玻片的稳定性取决于抗原性质;一些抗原很不稳定必须涂片后立刻染色。

六、 冰 冻 切 片

(1) 切 4 个 7pm 厚的未固定的冰冻切片。

(2) 将切片置于硅烷/聚左旋赖氨酸包被的载玻片上。

(3) 将切片在空气中风干 30 min。

(4) 置于预冷至 4°C 的新鲜丙酮中,固 定 20 min。

(5) 室温风干切片至少 15 mm。
(6) 将切片染色。

七、 注意

(1) 1 0 0 % 乙 醇 可 替 代 新鲜丙酮使用;固定剂的选择取决于组织中要染色的目的抗原。

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