实验方法

反向PCR

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标准 PCR 技术应用于定位在两个引物之间(指向内部)的一段 DNA 片段的扩增。与此相反,反向 PCR (inverse PCR) 应用于扩增和克隆与已知 DNA 序列某一个末端相邻的侧翼的未知 DNA 序列,这种未知序列没有引物可以利用。本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等译。

反向PCR

实验原理

标准 PCR 技术应用于定位在两个引物之间(指向内部)的一段 DNA 片段的扩增。与此相反,反向 PCR (inverse PCR) 应用于扩增和克隆与已知 DNA 序列某一个末端相邻的侧翼的未知 DNA 序列,这种未知序列没有引物可以利用。该项技术由几个研究小组开发(Ochmanetal. 1988; Triglia et al. 1988; Silver and Keerikatte 1989),包括对含有已知序列以及侧翼区域的基因组 DNA 样品用一种在靶序列中无切点的限制性内切酶消化;酶切片段(如果是总的哺乳动物基因组 DNA,这种酶切片段往往有成千上万种)依靠分子内部连接发生自身环化;然后用这种自身环化的 DNA 作为 PCR 扩增的模板。实验用一对与已知序列的两端特异性结合的引物,通过二个方向向夹在中间的未知序列区域扩增。

实验步骤

一、材料

1. 缓冲液与溶液

10X 扩增缓冲液

ATP ( 10 mmol/L )

氯仿

4 种 dNTP 贮存液(20 mmol/L,pH 8.0)

乙醇

酚:氯仿(1:1,V/V)

乙酸钠(3 mol/L)

TE ( pH 8.0)

Tris-Cl (10 mmol/L,pH 7.6)

2. 酶与缓冲液

噬菌体 T4 连接酶(1 单位/μl)

限制性内切核酸酶

热稳定 DNA 聚合酶

3. 凝胶

琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶

4. 核苷酸与寡核苷酸

寡核苷酸引物1 ( 20 μmol/L) 和寡核苷酸引物2 ( 20 μmol/L)溶于水中

模板 DNA 溶于 10 mmol/L Tris-Cl (pH 7.6),内含少于 0.1 mmol/L EDTA

5. 特殊设备

自动微量移液器的屏蔽型枪头

离心管(0.5 ml,薄壁扩增反应专用离心管)

正向排液式移液器

PCR 仪

二、方法

1. 设计和合成寡聚核苷酸引物 1 与引物 2 是根据已知的 DNA 序列。

2. 消化 2~5 μg DNA 模板(序列复杂度小于 109 bp)应用适当的限制性内切核酸酶。抽提这种酶切消化的 DNA 样品,应用酚: 氯仿和氯仿各抽提样品一次;用 2.5 倍体积的乙醇沉淀 DNA 样品,再加 0.1 倍体积的 3 mol/L 乙酸钠;高速离心回收沉淀的 DNA 样品;沉淀用 TE ( pH 8.0) 溶解,使 DNA 样品的浓度为 100 μlg/ml。

3. 用一只 0.5 ml 灭菌离心管、扩增管或灭菌微量滴定板,依次加入以下连接反应试剂,内含浓度范围在 0.1~1 μg/ml 的酶切消化的模板 DNA 样品:

模板 DNA                                     10 ng~100 ng

10X 连接缓冲液                            10 μl

1 单位/μl 噬菌体 T4DNA 连接酶      4 μl

10 mmoI/L ATP                             10 μl

H2O 补足至                                  100 μl

反应管在 16℃ 水浴上放置 12~16 h。

4. 用酚: 氯仿和氯仿备抽提连接反应液 DNA 样品一次。用 2.5 倍体积的乙醇和 0.1 倍体积的 3 mol/L 乙酸钠沉淀 DNA 样品。用高速离心回收沉淀的 DNA 样品,用 10 mmol/L Tris ( pH 7.6) 或水溶解 DNA 样品。浓度配制成 100 μg/ml。

5. 用一只 0.5 ml 薄壁离心管,依次加入如下试剂,混合:

10X 扩增缓冲液                                      5 μl

20 mmol/L 4 种 dNTP 混合液(pH 8.0)  1 μl

20 mmol/L 寡核苷酸引物1                       2.5 μl

20 mmol/L 寡核苷酸引物2                       2.5 μl

1~5 单位/μl 热稳定 DNA 聚合酶              1.0 μl

H2O                                                      28~33 μl

已环化 DNA 模板                                   5~10 μl

总体积                                                  50 μl

6. 如果 PCR 仪没有配置加热盖,在反应混合液的上层加一滴矿物油(约 50 μl)防止样品在 PCR 反应多个加热与冷却的循环过程中蒸发。另一种方法是,如果应用热启动 PCR 程序,在反应混合液的上层加一层石蜡油。放置扩增离心管或微量滴定板在 PCR 仪上。按以下方法进行 PCR 扩增。典型的程序有变性、复性和聚合(延伸反应);相应的循环条件与温度列表如下:



7. 抽取每种扩增样品 5~10 μl,用琼脂凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳来分析扩增结果,用 DNA marker 来判断扩增片段的大小。凝胶一般用 EB ( 溴化乙锭)或 SYBR 金颗粒染色后来观察扩增的量与片段大小。

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