方案19.2 荧光检测支原体
实验原理
仪器/耗材
实验步骤
2. 加入来自所测试培养物的 1.5 ml 培养液。
3. 将上述培养物进行孵育直至细胞达到 50%~60% 汇合。
4. 移去培养液,并废弃之。
5. 用 BSS-PR (无酚红的 Hanks’BSS)或 D-PBSA (无 Ca2+,Mg2+ 的 Dulbecco’sPBSA)冲洗单层培养物,将冲洗液废弃。
6. 加入新鲜 BSS-PR 或 D-PBSA 按 50:50 的比例用固定液(新鲜制备的冰醋酸:甲醇(1:3,置冰上))稀释,冲洗单层培养物,废弃冲洗液。
7. 加入纯固定液,冲洗,废弃冲洗液。
8. 加入更多固定液(约 0.5 ml/cm2),固定 10 min。
9. 移去固定液,并将固定液废弃。
10. 如果准备贮存,则将单层培养物完全干燥(可在这个阶段积累标本,以后再染色)。
11. 如果你要直接进行染色,可用去离子水冲洗,并废弃冲洗液。
12. 在 BSS-PR 或 D-PBSA 溶液中加入 Hoechet 33258(Hoechst 33258 染料,50 ng/ml 溶于未加入酚红的 BSS (BSS-PR)或 D-PBSA),在室温下染色 10 min 。
13. 移去染色液,并将其废弃。
14. 用水冲洗单层培养物,废弃冲洗液。
15. 加一滴封固剂(缓冲液配制的甘油溶液)封固盖玻片,擦去来自盖玻片边缘的多余封固剂。
16. 用 330/380 nm 激光滤片和 LP 440 nm 屏障滤片,对单层培养物进行荧光检査。