噬菌体的检查及效价测定
实验原理
检样可以是发酵液、空气、污水、土壤等（至于无法采样而需检查的对象，可以用无菌水浸湿的棉花涂拭表面作为检查样品）。为了易于分离可先经增殖培养，使样品中的噬菌体数量增加。
采用生物测定法进行噬菌体检查，约需12h左右，因而不能及时判断是否有噬菌体污染。通过快速检查可大致确定是否有噬菌体污染，以采取必要的防治措施。根 据正常发酵（培养）液离心后菌体沉淀，上清液蛋白含量很少，加热后仍然清亮；而侵染有噬菌体的发酵（培养）液经离心后其上清液中因含有自裂解菌中逸出的活 性蛋白，加热后发生蛋白质变性，因而在光线照射下出现丁达尔效应而不清亮。此法简单、快速，对发酵液污染噬菌体的判断亦较准确。但不适于溶源性细菌及温合 噬菌体的诊断，对侵染噬菌体较少的一级种子培养液也往往不适用。
噬菌体的效价即1mL样品中所含侵染性噬菌体的粒子数。效价的测定一般采用双层琼脂平板法。由于在含有特异宿主细菌的琼脂平板上，一般一个噬菌体产生一个 噬菌斑，故可根据一定体积的噬菌体培养液所出现的噬菌斑数，计算出噬菌体的效价。此法所形成的噬菌斑的形态、大小较一致，且清晰度高，故计数比较准确，因而被广泛应用。
试剂/试剂盒
实验步骤
① 样品采集
将2——3g土样或5mL水样（如阴沟污水）放入灭菌三角瓶中，加入对数生长期的敏感指示菌（大肠杆菌）菌液3——5mL，再加20mL二倍肉汤蛋白胨培养液。
② 增殖培养
30℃振荡培养12——18h, 使噬菌体增殖。
③ 离心分离
将上述培养液以3000rpm离心15——20min，取上清液，用pH7.0，1%蛋白胨水稀释至10-2——10-3，用于噬菌体检查及效价测定。
④ 生物测定法：
双层琼脂平板法；
倒下层琼脂，融化下层培养基，倒平板（约10mL/皿）待用。
倒上层琼脂
融化上层培养基，待融化的上层培养基冷却至50℃左右时，每管中加入敏感指示菌 （大肠杆菌） 菌液0.2mL，待检样品液或上述噬菌体增殖液0.2——0.5mL，混合后立即倒入上层平板铺平。
恒温培养：30℃恒温培养6——12h观察结果。
观察结果：如有噬菌体，则在双层培养基的上层出现透亮无菌圆形空斑噬菌斑。
单层琼脂平板法
省略下层培养基，将上层培养基的琼脂量增加至2%，融化后冷却至45℃左右，如同上法加入指示菌和检样，混合后迅速倒平板。30℃恒温培养6——16h后观察结果。
⑤ 离心分离加热法（快速检查）
取大肠杆菌正常培养液和侵染有噬菌体的异常大肠杆菌培养液，4000rpm离心20min，分别取两组发酵液的上清液（A1），一部分于721分光光度计上测定OD650光密度值，另外各取5mL上清液于试管中，置水浴中煮沸2min（A2），检测A2溶液OD650光密度值，记录结果。
2. 噬菌体效价的测定：
① 倒平板
将融化后冷却到45℃左右的下层肉膏蛋白胨固体培养基倾倒于11个无菌培养皿中，每皿约倾注10mL培养基，平放，待冷凝后在培养皿底部注明噬菌体稀释度。
② 稀释噬菌体
按10倍稀释法，吸取0.5mL大肠杆菌噬菌体，注入一支装有4.5mL1%蛋白胨水的试管中，即稀释到10-1，依次稀释到10-6稀释度。
3. 噬菌体与菌液混合：
将11支灭菌空试管分别标记10-4、10-5、10-6和对照。分别从10-4、10-5和10-6噬菌体稀释液中吸取0.1mL于上述编号的无菌试管 中，每个稀释度平行做三个管，在另外两支对照管中加0.1mL无菌水，并分别于各管中加入0.2mL大肠杆菌菌悬液，振荡试管使菌液与噬菌体液混合均匀， 置37℃水浴中保温5min，让噬菌体粒子充分吸附并侵入菌体细胞。
4. 接种上层平板：
将11支融化并保温于45℃的上层肉膏蛋白胨半固体琼脂培养基5mL分别加入到含有噬菌体和敏感菌液的混合管中，迅速搓匀，立即倒入相应编号的底层培养基平板表面，边倒入边摇动平板使其迅速地铺展表面。水平静置，凝固后置37℃培养。
5. 观察并计数：
观察平板中的噬菌斑，并将结果记录于 计算公式：N=Y/V%×X
（N：效价值，Y：平均噬菌斑数／皿，V：取样量，X：稀释度）
注意事项
（1）培养基应用自来水配制，不能用无离子水或蒸馏水配制，否则始终培养不出污染的噬菌体斑。
（2）如果在自来水中加入 0.02%镁离子配制噬检培养基，效果比纯粹用自来水显著，容易检出噬菌斑，且速度快。
（3）Mg2+、Mn2+对噬菌体繁殖是不可缺少的因子，Cu2+、Fe2+对噬菌体有抑制作用，Na+、K+、PO43-没有效果。
