1. 特异性CTL的诱导和制备

①  取作者外周血分离PBMC，无血清1640洗两遍，用含20%的新生牛血清的RPMI 1640调成1.5×106 /ml，置于24孔板中，于5% CO2 培养箱中4小时使单核细胞贴壁以去除之，然后收集细胞，计数；

②  取EB病毒转化的B淋巴母细胞，加入丝裂霉素C，最终浓度为30μg/ml，于37℃水浴中作用30min，1000r/min离心10min，弃上清，沉淀细胞用1640液洗涤3次并计数；

③  取2×106 个PBL于24孔板中，加入5×104 （2.5%）个经丝裂霉素C处理（30mg/ml、30min）的自身、同种异体（其HLA-I类型别完全不同）的EBV-LCL细胞作为刺激细胞，混匀，用完全培养基（RPMI 1640）补总体积至2ml；

④  静置于培养箱中；4d后半量换液，继续培养3d；

⑤  离心收集细胞，取1×106 个反应细胞，加入2×105个（20%）的刺激细胞，第三天加入重组IL-2，使终浓度为30U/ml；每三天半量换液一次并维持相同IL-2浓度。

⑥  每周按相同程序刺激效应细胞一次，3~4次后，效应细胞即为特异性CTL，可用于杀伤实验。

2. 细胞毒试验

检测CTL细胞毒作用均可采用检测NK细胞杀伤活性的方法，仅效靶细胞比例不一样，现将LDH释放法简要叙述如下：

①  靶细胞为用作刺激细胞的自身或同种异体EBV-LCL细胞，调成1×105/ml；

②  效应细胞为上述诱导的特异性CTL，调成2.5×106/ml；

③  各取0.1ml于96孔板中（效/靶比值为25:1）；轻轻吹打，使二者混匀；同时设靶细胞自然释放对照组（即只加靶细胞而不加效应细胞）和最大释放对照组（0.1ml靶细胞和0.1ml 1% NP-40）；

④  1000rpm/min离心2min后，置37°C、5% CO2 培养箱中孵育4hr

⑤  酶促显色反应：参见“NK细胞杀伤实验”。

1.对细胞的诱导和制备中，要使得单核细胞贴壁去除，然后才开始收集细胞，防止细胞污染。

2. 设置对照组，防止产生假阳性或假阴性等结果。

3. 生物污染会导致细胞增殖功能的降低

1. 使用冷冻细胞时，需要复苏后检测细胞的活力。

2. 培养液中加的血清，有些血清可能抑制反应。

3. 本底应小于2000rpm，阴性对照组应该大于20000rpm。